Испытательные лаборатории являются частью процесса сертификации. Должна быть зарегистрирована юридически. В такой лаборатории должны быть высококвалифицированные сотрудники и оборудование, которое необходимо для проведения аккредитации.
В эпоху современности существует немало видов испытательных лабораторий. Узнать больше о лабораториях медицинской направленности можно https://www.mt.com/ru/ru/home/industries/Labs-Health.html здесь. Необходимы испытательные лаборатории для следующих сфер деятельности:
- Пищевая.
- Химическая.
- Медицинская.
Существует также электролаборатория. Это новая сфера использования лабораторий, так как для испытания электрически приборов необходимо дорогостоящее оборудование. Чаще всего испытательные лаборатории необходимы для исследования пищевой продукции. Благодаря им можно установить характеристики определенного продукта, выявить ряд нарушений в его приготовлении, определить вредные, ядовитые вещества.
Особо тщательную проверку проходят медицинские препараты. Каждый компонент необходимо изучить, ведь от действия препарата будет зависеть состояние человека. Без лабораторных исследований лекарство не допускается к продаже, ведь таким образом его нельзя считать безопасным. Без исследований и тестирований медикамент считается опасным, может причинить вред.
Контрольные лаборатории для пищевой промышленности
Лаборатории для пищевой промышленности должны соответствовать определенным требованиям. Они применяются на птицефабриках, кондитерских заводах, предприятиях по производству молочной продукции. Практически на каждом современном пищевом предприятии имеется такая лаборатория. При выявлении каких-либо нарушений продукт изымают с производства, а рецепт приготовления меняют, чтобы в итоге производился безопасный для человеческого организма продукт.
В лабораториях критериями качества продукт являются микробиологические и физико-химические показатели. На исследование продукта может уйти от нескольких часов до нескольких дней. Все зависит от количества ингредиентов в пище, степени исследования. В некоторых случаях требуется более тщательное изучение продукта.
Каждая лаборатория должна соответствовать современным требованиям, без специального оборудования она не может быть зарегистрирована и открыта. При успешном прохождении проверки, лаборатория выдает производителю продукции официальный сертификат. Это обязательное завершение успешной проверки. При выявлении у продукта нарушений сертификаты не выдаются.
Виды лабораторий, их назначение. Клинико-диагностическая - определение физико-химических свойств биологических субстратов и микроскопия. Например, общий анализ (крови, мочи, мокроты, кала), анализы мочи по Зимницкому и Нечипоренко, кал на скрытую кровь, кал на яйца гельминтов. Биохимическая - определение химических свойств биологических субстратов. Например, печеночные пробы крови (общий белок, билирубин, тимоловая и сулемовая пробы), кровь на ревматесты. Бактериологическая (лаборатория клинической микробиологии) - выявление микробного состава и идентификация микрофлоры (кровь на стерильность, моча на биопосев, кал на кишечную группу и дисбактериоз. Иммунологическая - Проведение исследований по маркерам к некоторым инфекционным агентам, а также к естественным антителам к широко известным бактериям и вирусам (кровь на ВИЧ, гепатиты В, С и др.).
Слайд 5 из презентации «Участие медицинской сестры в лабораторных исследованиях пациента»Размеры: 720 х 540 пикселей, формат: .jpg. Чтобы бесплатно скачать слайд для использования на уроке, щёлкните на изображении правой кнопкой мышки и нажмите «Сохранить изображение как...». Скачать всю презентацию «Участие медицинской сестры в лабораторных исследованиях пациента.pptx» можно в zip-архиве размером 2619 КБ.
Лабораторные по физике
«Лабораторные по физике» - Модули – лабораторные работы. Составьте план эксперимента. В зависимости от заданных параметров модуль отрабатывает анимацию и расчёты. Проведя эксперимент, определите площадь кюветы. Введение. Фестиваль «Использование информационных технологий в образовательной деятельности». Интерактивные лабораторные работы в курсе физики 7-11 классов.
«Лабораторная работа» - Цифровая коллекция лабораторных работ по физике Цифровая коллекция лабораторных работ по биологии и экологии* Цифровая коллекция лабораторных работ по химии* ______________________________________ * В разработке. Добавление фронтальных заданий для всего класса. Как методическое пособие для учителя по выполнению широкого спектра экспериментов с цифровым датчиками как лабораторный практикум для выполнения работ учащимися как рабочую тетрадь – рабочие бланки учащихся как редактируемую открытую коллекцию ресурсов, для подготовки к урокам и планирования занятий, позволяющую осуществлять экспорт и импорт учебных материалов как удобную оболочку, позволяющую организовать контроль знаний учащихся (тренинги, зачеты, экзамены).
«Демонстрация опытов» - Почему так происходит? Зажмем в тисках металлическую линейку. Вынужденные колебания. Объяснить принцип действия данного прибора. Демонстрация проводится в следующем порядке:1. Сделать приборы вызывающие большой интерес у учащихся. Просунув в кольцо линейку, ударьте ею по кольцу. Конус будет передвигаться вверх, пока своими концами не попадет в вырезы.
«Опыты по физике» - Спектры магнитных полей. Измерение КПД. Индукционный ток. Время определяется при помощи секундомера. Как зависит период и частота свободных колебаний. Зависимость индукционного тока. Соотношение между моментами сил. Чем больше длина, тем меньше частота. Действия тока могут быть разными. Показания приборов.
По степени радиационной опасности работы с открытыми радиоактивными веществами делятся на три класса в зависимости от активности на рабочем месте, группы радиотоксичности радиоактивного изотопа и характера выполняемой работы.
Классификация работ, проводимых с открытыми радиоактивными веществами при обычных химических операциях, приведена в табл. 13.
ТАБЛИЦА 13. Классификация работ, проводимых с открытыми радиоактивными веществами
Для установления класса работ с другими видами химических операций при использовании изотопов данной группы токсичности (см. стр. 328) следует соответствующую величину, приведенную в табл. 13, умножить на поправочный коэффициент, значения которого указаны ниже:
Поправочный
Характер процесса коэффициент
В соответствии с классом работ лаборатории должны иметь соответствующее оборудование, и их также делят на три класса.
При работах третьего класса к планировке лабораторий особых требований не предъявляется, но их лучше проводить в отдельных помещениях. Оборудование лабораторий должно соответствовать требованиям, предъявляемым к обычным химическим лабораториям. Простые и обычные операции третьего класса можно выполнять на лабораторных столах, а более сложные - в обычных вытяжных шкафах с соблюдением соответствующих мер предосторожности.
Работы второго класса проводятся в отдельных, специально оборудованных помещениях. В такой лаборатории должно быть особое хранилище изотопов, отдельные помещения для расфасовки, для химической работы, для измерений, душевая, пункт дозиметрического контроля, помещение для приема и хранения пищи. В лабораториях устанавливается повышенный (5 - 10-кратный) обмен воздуха, специальные шкафы, боксы и защитные камеры. Особые требования предъявляются к покрытию стен, полов, оборудованию.
Хранилище радиоактивных веществ должно быть размещено в отдельном помещении и оборудовано сейфами для хранения радиоактивных веществ, средствами для перемещения тяжелых защитных контейнеров, местом предварительной обработки веществ с дистанционным оборудованием.
В сейфы радиоактивные вещества помещаются в контейнерах.
В лаборатории должны быть защитные экраны (стационарные или разборные), средства дистанционной работы (ручные и механические манипуляторы, щипцы и т. п.).
Все работы второго класса выполняются в вытяжных шкафах или боксах.
Описание лабораторий для работ первого класса не входит в нашу задачу, так как такие работы проводятся только при активационном анализе, с использованием ядерного реактора.
Все микробиологические, биохимические и моле-кулярно-биологические исследования микроорганизмов про-водят в специальных лабораториях, структура и оборудование которых зависят от объектов исследования (бактерий, вирусов, грибов, простейших), а также от их целевой направленности (научные исследования, диагностика заболеваний). Изучение иммунного ответа и серодиагностика заболеваний человека и животных осуществляют в иммунологических и серологичес-ких (serum — сыворотка крови) лабораториях.
Бактериологические, вирусологические, микологические и серологические (иммунологические) лаборатории входят в со-став санитарно-эпидемиологических станций (СЭС), диагнос-тических центров и крупных больниц. В лабораториях СЭС выполняют бактериологические, вирусологические и серологи-ческие анализы материалов, полученных от больных и контак-тировавших с ними лиц, обследуют бактерионосителей и про-водят санитарно-микробиологические исследования воды, воз-духа, почвы, пищевых продуктов и т.д.
В бактериологических и серологических лабораториях боль-ниц и диагностических центров проводят исследования с целью диагностики кишечных, гнойных, респираторных и дру-гих инфекционных заболеваний, осуществляют микробиологи-ческий контроль за стерилизацией и дезинфекцией.
Диагностику особо опасных инфекций (чума, туляремия, сибирская язва и др.) проводят в специальных режимных ла-бораториях, организация и порядок деятельности которых строго регламентированы.
В вирусологических лабораториях диагностируют заболева-ния, вызванные вирусами (грипп, гепатит, полиомиелит и др.), некоторыми бактериями — хламидиями (орнитоз и др.) и риккетсиями (сыпной тиф, Ку-лихорадка и др.). При организации и оборудовании вирусологических лабораторий учитывают спе-цифику работы с вирусами, культурами клеток и куриными эмбрионами, требующую строжайшей асептики.
В микологических лабораториях проводят диагностику за-болеваний, вызываемых патогенными грибами, возбудителями микозов.
Лаборатории обычно размещаются в нескольких помещени-ях, площадь которых определяется объемом работ и целевым назначением.
В каждой лаборатории предусмотрены:
а) боксы для работы с отдельными группами возбудителей;
б) помещения для серологических исследований;
в) помещения для мойки и стерилизации посуды, приготов-
ления питательных сред;
г) виварий с боксами для здоровых и подопытных живот-
ных;
д) регистратура для приема и выдачи анализов.
Наряду с этими помещениями в вирусологических лабора-ториях имеются боксы для специальной обработки исследуе-мого материала и работы с культурами клеток.
Оборудование микробиологических лабораторий
Лаборатории снабжены рядом обязательных приборов и аппаратов.
1. Приборы для микроскопии: биологический иммерсион-ный микроскоп с дополнительными приспособлениями (ос-ветитель, фазово-контрастное устройство, темнопольный кон-денсор и др.), люминесцентный микроскоп.
2. Термостаты и холодильники.
3. Приборы для приготовления питательных сред, растворов и т.д.: аппарат для получения дистиллированной воды (дистил-лятор), технические и аналитические весы, рН-метры, аппара-тура для фильтрования, водяные бани, центрифуги.
4. Набор инструментов для манипуляций с микробами: бак-териологические петли, шпатели, иглы, пинцеты и др.
5. Лабораторная посуда: пробирки, колбы, чашки Петри, матрацы, флаконы, ампулы, пастеровские и градуированные пипетки и др., аппарат для изготовления ватно-марлевых про-бок.
Крупные диагностические комплексы имеют автоматичес-кие анализаторы и компьютеризированную систему оценки полученной информации.
В лаборатории выделено место для окраски микроскопичес-ких препаратов, где находятся растворы специальных красите-лей, спирт, кислоты, фильтровальная бумага и др. Каждое рабочее место снабжено газовой горелкой или спиртовкой и емкостью с дезинфицирующим раствором. Для повседневной работы лаборатория должна располагать необходимыми пита-тельными средами, химическими реактивами, диагностически-ми препаратами и другими материалами.
В крупных лабораториях имеются термостатные комнаты для массового выращивания микроорганизмов, постановки се-рологических реакций. Для выращивания, хранения культур, стерилизации лабораторной посуды и других целей используют следующую аппаратуру.
1. Термостат. Аппарат, в котором поддерживается постоян-ная температура. Оптимальная температура для размножения большинства патогенных микроорганизмов 37 "С. Термостаты бывают воздушными и водяными.
2. Микроанаэростат. Аппарат для выращивания микроорга-низмов в анаэробных условиях.
3. С0 2 -инкубатор. Аппарат для создания постоянной тем-пературы и атмосферы определенного газового состава. Пред-назначен для культивирования микроорганизмов, требователь-ных к газовому составу атмосферы.
4. Холодильники. Используют в микробиологических лабора-ториях для хранения культур микроорганизмов, питательных сред, крови, вакцин, сывороток и прочих биологически актив-ных препаратов при температуре около 4 °С. Для хранения препаратов при температуре ниже О °С применяют низкотем-пературные холодильники, в которых поддерживается темпе-ратура —20 °С или —75 "С.
5. Центрифуги. Применяют для осаждения микроорганиз-мов, эритроцитов и других клеток, для разделения неоднород-ных жидкостей (эмульсии, суспензии). В лабораториях исполь-зуют центрифуги с различными режимами работы.
6. Сушилъно-стерилизационный шкаф (печь Пастера). Пред-назначен для суховоздушной стерилизации стеклянной лабо-раторной посуды и других жаростойких материалов.
7. Стерилизатор паровой (автоклав). Предназначен для сте-рилизации перегретым водяным паром (под давлением). В ми-кробиологических лабораториях используют автоклавы разных моделей (вертикальные, горизонтальные, стационарные, пере-носные).
БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЕ, ВИРУСОЛОГИЧЕСКИЕ, МИКОЛОГИЧЕСКИЕ, ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ ЛАБОРАТОРИИ И ИХ ОБОРУДОВАНИЕ. УСТРОЙСТВО СОВРЕМЕННЫХ МИКРОСКОПОВ. МЕТОДЫ МИКРОСКОПИИ. МЕТОДЫ ИЗУЧЕНИЯ МОРФОЛОГИИ МИКРООРГАНИЗМОВ
Программа
1. Правила работы и организация микробиологических (бактериологических, вирусологических, микологи-ческих) лабораторий.
2. Основные приборы и оборудование микробиологичес-кой лаборатории.
3. Микроскопы и микроскопическая техника. Правила работы с иммерсионным микроскопом (объективами).
Демонстрация
1. Устройство и применение основных приборов и обо-рудования, используемого в микробиологических ла-бораториях: термостата, центрифуг, автоклава, су-шильного шкафа, инструментария и посуды.
2. Устройство биологического микроскопа. Различные ме-тоды микроскопии: темнопольная, фазово-контрастная, люминесцентная, электронная.
3. Препараты микробов (дрожжей и бактерий) при раз-личных методах микроскопии.
Задание студентам
1. Микроскопировать и зарисовать препараты дрожже-подобных грибов рода Candida , используя различные виды микроскопии.
Методические указания
Правила работы в микробиологических лабораториях .
Работу в микробиологической лаборатории медицинского учреждения проводят с возбудителями инфекционных заболеваний — пато-генными микроорганизмами.
Поэтому для предохранения от заражения персонал обязан строго соблюдать правила внутрен-него распорядка:
1. Все сотрудники должны работать в медицинских халатах, шапочках и сменной обуви. Вход в лабораторию без халата категорически воспрещен. В необходимых слу-чаях работающие надевают на лицо маску из марли. Ра-бота с особо опасными микробами регламентируется спе-циальной инструкцией и проводится в режимных лабора-ториях.
2. В лаборатории запрещается курить и принимать пищу.
3. Рабочее место должно содержаться в образцовом порядке. Личные вещи сотрудников следует хранить в специально отведенном месте.
4. При случайном попадании инфицированного мате-риала на стол, пол и другие поверхности это место необ-ходимо тщательно обработать дезинфицирующим раство-ром.
5. Хранение, наблюдение за культурами микробов и их уничтожение должны производиться согласно специаль-ной инструкции. Культуры патогенных микробов реги-стрируют в специальном журнале.
6. По окончании работы руки следует тщательно вы-мыть, а при необходимости обработать дезинфицирующим раствором.
Микроскопы и методы микроскопии
Рис. 1.1. Микроскопы.
а — общий вид микроскопа "Биолам"; б — микроскоп МБР-1: 1 — основание микроскопа; 2 — предметный столик; 3 — винты для перемещения предмет-ного столика; 4 — клеммы, прижимающие препарат; 5 — конденсор; 6 — кронштейн конденсора; 7 — винт, укрепляющий конденсор в гильзе; 8 — рукоятка перемещения конденсора; 9 — рукоятка ирисовой диафрагмы кон-денсора; 10 — зеркало; 11 — тубусодержатель; 12 — рукоятка макрометричес-кого винта; 13 — рукоятка микрометрического винта; 14 — револьвер объек-тивов; 15 — объективы; 16 — наклонный тубус; 17 — винт для крепления ту-буса; 18 — окуляр.
Для микробиологических исследований используют не-сколько типов микроскопов (биологический, люминесцентный, электронный) и специальные методы микроскопии (фа-зово-контрастный, темнопольный).
В микробиологической практике применяют микроскопы отечественных марок: МБР-1, МБИ-2, МБИ-3, МБИ-6, "Био-лам" Р-1 и др. (рис. 1.1). Они предназначены для изучения формы, структуры, размеров и других признаков различных микробов, величина которых не менее 0,2—0,3 мкм.
Иммерсионная микроскопия
Применяется для увеличения разрешающей способности метода световой микроскопии . Раз-решающая способность системы светооптической микроско-пии определяется длиной волны видимого света и числовой апертурой системы. Числовая апертура показывает величину угла максимального конуса света, попадающего в объектив, и зависит от оптических свойств (преломляющей способности) среды между объектом и линзой объектива. Погружение объ-ектива в среду (минеральное масло, вода), имеющую высокий коэффициент преломления, близкий к таковому стекла, пре-пятствует рассеянию света от объекта.
Рис. 1.2. Ход лучей в иммерсионной системе, п — показатель преломления.
Рис. 1.3. Ход лучей в темнопольных конденсорах, а — параболоид-конденсор; б — кардиоид-конденсор; 1 — объектив; 2 — иммерсионное масло; 3 — препарат; 4 — зеркальная поверхность; 5 — диа-фрагма.
Таким образом достигается увеличение числовой апертуры и соответственно разре-шающей способности. Для иммерсионной микроскопии при-меняют специальные иммерсионные объективы, снабженные меткой (МИ — масляная иммерсия, ВИ — водная иммерсия). Предельная разрешающая способность иммерсионного микро-скопа не превышает 0,2 мкм. Ход лучей в иммерсионной системе показан на рис. 1.2.
Общее увеличение микроскопа определяется произведением увеличения объектива на увеличение окуляра. Например, уве-личение микроскопа с иммерсионным объективом 90 и окуля-ром 10 составляет: 90 x 10 = 900.
Микроскопия в проходящем свете (светлопольная микроско-пия) используется для изучения окрашенных объектов в фик-сированных препаратах.
Темнопольная микроскопия . Применяется для прижизненно-го изучения микробов в нативных неокрашенных препаратах. Микроскопия в темном поле зрения основана на явлении дифракции света при боковом освещении частиц, взвешенных в жидкости (эффект Тиндаля ). Эффект достигается с помощью параболоид- или кардиоид-конденсора, которые заменяют обычный конденсор в биологическом микроскопе (рис. 1.3). При этом способе освещения в объектив попадают только лучи, отраженные от поверхности объекта. В результате на темном фоне (неосвещенном поле зрения) видны ярко светя-щиеся частицы. Препарат в этом случае имеет вид, показанный на рис. 1.4, б (на вклейке).
Фазово-контрастная микроскопия . Предназначена для изуче-ния нативных препаратов. Фазово-контрастное приспособле-ние дает возможность увидеть в микроскоп прозрачные объек-ты. Свет проходит через различные биологические структуры с разной скоростью, которая зависит от оптической плотности объекта. В результате возникает изменение фазы световой волны, не воспринимаемое глазом. Фазовое устройство, вклю-чающее особые конденсор и объектив, обеспечивает преобра-зование изменений фазы световой волны в видимые изменения амплитуды. Таким образом достигается усиление различия в оптической плотности объектов. Они приобретают высокую контрастность, которая может быть позитивной или негатив-ной. Позитивным фазовым контрастом называют темное изо-бражение объекта в светлом поле зрения, негативным — свет-лое изображение объекта на темном фоне (см. рис. 1.4; на вклейке).
Для фазово-контрастной микроскопии используют обыч-ный микроскоп и дополнительное фазово-контрастное устрой-ство КФ-1 или КФ-4 (рис. 1.5), а также специальные освети-тели.
Люминесцентная (или флюоресцентная) микроскопия. Осно-вана на явлении фотолюминесценции.
Люминесценция — свечение веществ, возникающее под воздействием внешнего излучения: светового, ультрафиолето-вого, ионизирующего и др. Фотолюминесценция — люмине-сценция объекта под влиянием света. Если освещать люминес-цирующий объект синим светом, то он испускает лучи крас-ного, оранжевого, желтого или зеленого цвета. В результате возникает цветное изображение объекта.
Рис. 1.5. Фазово-контрастное устройство, а — фазовые объективы; б — вспомогательный микроскоп; в — фазовый кон-денсор.
Длина волны излучаемого света (цвет люминесценции) зависит от физико-хими-ческой структуры люминесцирующего вещества.
Первичная люминесценция биологических объектов (собст-венная, или биолюминесценция) наблюдается без предвари-тельного окрашивания за счет наличия собственных люминес-цирующих веществ, вторичная (наведенная) — возникает в ре-зультате окрашивания препаратов специальными люминесци-рующими красителями — флюорохромами (акридиновый оран-жевый, ауромин, корифосфин и др.). Люминесцентная микро-скопия по сравнению с обычными методами обладает рядом преимуществ: возможностью исследовать живые микробы и обнаруживать их в исследуемом материале в небольших кон-центрациях вследствие высокой степени контрастности.
В лабораторной практике люминесцентную микроскопию широко применяют для выявления и изучения многих микро-бов.
Электронная микроскопия . Позволяет наблюдать объекты, размеры которых лежат за пределами разрешающей способнос-ти светового микроскопа (0,2 мкм). Электронный микроскоп применяют для изучения вирусов, тонкого строения различных микроорганизмов, макромолекулярных структур и других суб-микроскопических объектов. Световые лучи в таких микроско-пах заменяет поток электронов, имеющий при определенных ускорениях длину волны около 0,005 нм, т.е. почти в 100 000 раз меньше длины волны видимого света. Высокая разре-шающая способность электронного микроскопа, достигаю-щая 0,1-0,2 нм, позволяет получить общее полезное увеличе-ние до 1 000 000.
Наряду с приборами "просвечивающего" типа используют сканирующие электронные микроскопы, обеспечивающие рель-ефное изображение поверхности объекта. Разрешающая спо-собность этих приборов значительно ниже, чем у электронных микроскопов "просвечивающего" типа.
Правила работы с микроскопом
Работа с любым световым микроскопом включает установку правильного освещения по-ля зрения и препарата и его микроскопию различными объек-тивами. Освещение может быть естественным (дневным) или искусственным, для чего используют специальные источники света — осветители разных марок.
При микроскопии препаратов с иммерсионным объективом следует строго придерживаться определенного порядка:
1) на приготовленный на предметном стекле и окрашенный мазок нанести каплю иммерсионного масла и поместить его на предметный столик, укрепив зажимами;
2) повернуть револьвер до отметки иммерсионного объек-тива 90х или 10Ох;
3) осторожно опустить тубус микроскопа до погружения объектива в каплю масла;
4) установить ориентировочный фокус при помощи макрометрического винта;
5) провести окончательную фокусировку препарата микро- метрическим винтом, вращая его в пределах только одного оборота.
Нельзя допускать соприкосновения объектива с пре-
паратом, так как это может повлечь поломку покровного стек-ла или фронтальной линзы объектива (свободное расстояние иммерсионного объектива 0,1—1 мм).
По окончании работы микроскопа необходимо удалить мас-ло с иммерсионного объектива и перевести револьвер на малый объектив 8х.
Для темнопольной и фазово-контрастной микроскопии ис-пользуют нативные препараты ("раздавленная" капля и др., см. тему 2.1); микроскопируют с объективом 40х или специальным иммерсионным объективом с ирис-диафрагмой, позволяющей регулировать численную апертуру от 1,25 до 0,85. Толщина предметных стекол не должна превышать 1 — 1,5 мм, покров-ных — 0,15—0,2 мм.
Виды лабораторий, их назначение
Клинико – диагностическая
Определение физико – химических свойств биологических субстратов(например, общий анализ крови, мочи, мокроты;
Биохимическое исследование крови: холестерин, общий белок, билирубин, кал на скрытую кровь, яйца гельминтов, простейшие)
Для транспортировки биоматериалов в лабораторию используют специальные контейнеры(одноразового пользования) ил чистую, сухую стеклянную посуду.
Бактериологическая
Выявление микробного состава и идентификация микрофлоры (например, моча на стерильность, кал на кишечную группу, мазок из зева при подозрении на дифтерию)
Сестра получает для забора материала стерильную посуду, подготовленную в бактериологической лаборатории.
Иммунологическая/вирусологическая
Проведение исследований по маркерам к некоторым инфекционным агентам, а также по естественным(нормальным) антителам к широко распространенным бактериям и вирусам(кровь на ВИЧ, гепатиты В и С, RW- инфекцию).
Для транспортировки биоматериала используют специальную лабораторную посуду)
Материал для лабораторных исследований – это различные биологические жидкости
(субстраты):
- кровь, ее компоненты(плазма, эритроциты)
- желудочный сок
- желчь
- мокрота
- выпотные жидкости(экссудат, транссудат)
- ткани паренхиматозных органов, получаемых при биопсии
ПОМНИТЕ!
- Перед взятием биологического субстрата необходимо получить информированное согласие пациента на выполнение процедуры.
- Необходимо соблюдать конфиденциальность результатов обследования.
ЗНАЙТЕ!
Срочность исследования биологического материала указывают символом « CITO»
Лабораторная посуда, транспортировка биоматериала
Стеклянная посуда, до настоящего времени широко используемая для сбора биоматериала, не может гарантировать герметичного и надежного хранения материала, а также удобства работы с пробами.
Для сбора мочи, кала, мокротыпредпочтительнее использовать контейнеры (Рис.1).
Контейнеры для сбора биоматериала
Контейнеры имеют градуировку от 30 до 100 мл. Крышки с резьбой обеспечивают герметичность контейнеров, что соответствует требованиям, предъявляемым к транспортировке и хранению биоматериалов. Контейнеры для кала снабжены шпателем.
Преимущество использования контейнеров:
Отпала проблема поиска и обработки неспециализированной тары;
Биоматериал удобно транспортировать из отделений в лабораторию (исключается расплескивание и испарение);
В исследуемом биоматериале снизилось количество посторонних примесей.
Особые требования предъявляются к лабораторной посуде для бактериологического исследования.
Бактериология – прямой метод выращивания возбудителей на питательных средах с последующим подсчетом числа выросших колоний, определением вида возбудителя и его чувствительности к антибактериальным препаратам.
Рис. 2. Стерильные пробирки для взятия мазков
Отбор проб для бактериологического исследования осуществляется в стерильную лабораторную посуду (рис. 2).
Пробы крови собирают в вакуумные пробирки (Рис. 3).Пробирка может содержать наполнители (реактивы и другие добавки). Цвет крышки зависит от вида исследования и состава реагентов в пробирке.
Рис 3. Вакуумные пробирки
Транспортируют биоматериал в закрытых контейнерах, термосумках (Рис.4), подвергающихся дезинфекционной обработке. При транспортировке сопроводительную документацию помещают в упаковку, исключающую возможность её загрязнения биоматериалом. Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.
Рис. 4. Транспортные контейнеры (А – термосумка, Б – контейнер для транспортировки крови, В – контейнер для транспортировки мочи)
Оформление направлений
Материал для исследований доставляется в лабораторию с сопроводительным бланком, в котором указывают: наименование исследования, биоматериала; фамилию, имя, отчество пациента, пол, возраст; предполагаемый диагноз; фамилию, имя, отчество врача, назначившего исследование; дату и время взятия и сдачи биоматериала в лабораторию (рис.5).
Рис. 5. Образец направления
До недавнего времени результаты исследований вписывались вручную в бланки направлений.
Современные анализаторы позволяют распечатать результат исследования, нормы показателей.
Исследование крови
Кровь состоит из жидкой части – плазмы и форменных элементов – клеток крови. Клетки занимают от общего объема крови приблизительно 45% (гематокритное число). Общий объем крови в организме человека составляет 4,5-5,0 литра. Кровь, омывая все клетки и ткани организма, участвует в транспорте продуктов питания и кислорода, удалении конечных продуктов обмена веществ и т.д. Плазма содержит белки, ферменты, гормоны, минеральные вещества и т.д. Для лабораторных исследований используется как сама плазма, полученная после отделения клеток крови центрифугированием, так и сыворотка - остающаяся жидкая часть после свертывания крови (образования сгустка).
Взятие крови из вены проводится медицинской сестрой, из пальца – медицинским лабораторным техником.
Доставка в лабораторию.
Показатели гемостаза
Протромбиновый индекс
90-105% или 12-20 сек.
не требуется. Проводится только информирование о предстоящей манипуляции.
Оснащение: все для забора крови из пальца, секундомер, капилляр, предметное стекло.
Забор крови проводится из пальца по обычным правилам.
Способ первый – после прокола пальца и удаления первой капли крови, кровь в капилляр набирается 2 – 3 см. Отмечается время. Капилляр поворачивают таким образом, чтобы столбик крови двигался, но не приближался близко к краю. Как только столбик крови при движении капилляра перестает перемещаться, снова отмечают время. Таким образом, время свертывания – это время, от момента взятия крови до остановки столбика крови.
Способ второй - после прокола пальца и удаления первой капли крови, кровь капается на предметное или часовое стекло. Отмечается время. Затем иголкой проверяется капля на наличие в ней первых нитей фибрина. Как только за иголкой потянется нить, снова отмечают время.
Доставка в лабораторию: не требуется, исследование проводится непосредственно на месте взятия крови.
Глюкозотолерантный тест
Глюкозотолерантный (глюкозонагрузочный) тест (ГТТ, ГНТ, «сахарная нагрузка») представляет собой обследование с введением определенной дозы глюкозы для проверки функции поджелудочной железы по снижению уровня гликемии (глюкозы крови) на протяжении 2 часов после приема.
В бета-клетках поджелудочной железы вырабатывается гормон инсулин , который снижает уровень сахара в крови. Клинические симптомы сахарного диабета появляются при поражении более 80-90% всех бета-клеток .
Глюкозотолерантный тест проводится при нормальном и пограничном (на верхней границе нормы) уровне глюкозы крови для различения сахарного диабета и нарушенной толерантности* к глюкозе (преддиабета). Толерантность - повышенная переносимость, безразличие.
Цель исследования : оценка углеводного обмена, основанная на определении уровня глюкозы в крови натощак и после нагрузки. Данный тест позволяет выявлять скрытые формы сахарного диабета и нарушение толерантности к глюкозе.
Нормальные значения:
Натощак:
· норма: < 5,6 ммоль/л
· нарушенная гликемия натощак: от 5,6 до 6,0 ммоль/л
· сахарный диабет: ≥ 6,1 ммоль/л
Через 2 часа:
· норма: < 7,8 ммоль/л
· нарушенная толерантность к глюкозе: от 7,8 до 10,9 ммоль/л
· сахарный диабет: ≥ 11 ммоль/л
Подготовка к исследованию:
1.Проведение инструктажа.
2.Выдача направления.
3. При подготовке к исследованию в течение 3-х предшествующих дней необходимо придерживаться обычной диеты, без ограничения углеводов (сахар, сладкие напитки, фрукты и т.д.).
4. За 3 дня до проведения теста необходимо отменить прием лекарственных средств: витамин С, салицилаты, оральные контрацептивы, кортикостероиды (решение об отмене медикаментозного лечения принимает лечащий врач).
5. Полное воздержание от приема пищи накануне взятия крови должно длиться не менее 8 ч., но и не более 14 ч. (после последнего приема пищи).
6. Накануне проведения теста необходимо исключить физические нагрузки, стрессовые ситуации, физиотерапевтические процедуры.
Взятие биологического материала: проводится медицинским лабораторным техником, работа медицинской сестры заключается в инструктировании пациента о необходимости соблюдения условий, обеспечивающих достоверность результата.
1. Проводится утром, строго натощак! Перед исследованием определяется уровень глюкозы – проведение глюкозотолерантного теста возможно при концентрации глюкозы не более 6,7 ммоль/л .
2. После чего пациент принимает заранее подготовленный и тщательно перемешанный раствор 75 г сухой глюкозы на 200 мл воды. Раствор необходимо выпить в течение 5 мин (не более!).
3. Во время проведения исследования нельзя употреблять любые жидкости (кроме воды), принимать пищу, курить. В течение 2-х часов после взятия крови необходимо находиться в состоянии покоя (лежать или сидеть).
4. Через 2 часа после приема раствора глюкозы проводится повторное взятие крови.
Доставка в лабораторию: взятиекрови проводится в лаборатории. Если взятие крови проводилось в отделении стационара, то доставка биоматериала осуществляется медицинским лабораторным техником.
Гликемический профиль
Гликемический профиль – колебания гликемии (уровня глюкозы в крови) в течение суток под влиянием лечения. Гликемический профиль позволяет сделать заключение об эффективности сахароснижающих лекарственных препаратов.
Процедура проводится по назначению врача. Врач определяет кратность забора крови (от 3 до 8 раз в сутки).
Цель исследования: выявление колебания уровня глюкозы в течение и суток для подбора дозы инсулина или таблетированных сахароснижающих средств.
Показания: сахарный диабет 1 и 2 типов.
Нормальные значения:
Для сахарного диабета I типа уровень глюкозы считается компенсированным, если ее концентрация натощак и в течение суток не превышает 10 ммоль/л. Для данной формы заболевания допустима небольшая потеря сахара с мочой – до 30 г/сут.
Сахарный диабет II типа считается скомпенсированным, если концентрация глюкозы в крови утром не превышает 6,0 ммоль/л, а в течение дня – до 8,25 ммоль/л. Глюкоза в моче определяться не должна
Подготовка к исследованию:
1.Проведение инструктажа.
2.Выдача направления.
3. Пациент в течение 3 дней перед процедурой и в день исследования находится на обычном водном и пищевом режиме.
4. Исключаются все лекарственные препараты, кроме необходимых по жизненным показаниям.
5. В день исследования отменяются все лечебные и диагностические процедуры, физические и психо-эмоциональные перенапряжения
Взятие биологического материала: проводится медицинским лабораторным техником (1 способ) или процедурной медицинской сестрой (2 способ). Работа медицинской сестры заключается в инструктировании пациента о необходимости соблюдения условий, обеспечивающих достоверность результата.
1 способ: забор крови проводится медицинским лаборантом-техником из пальца.
2 способ: забор крови провидится процедурной медицинской сестрой из вены.
Забор крови проводится за полчаса до основных приёмов пищи, то есть перед завтраком, обедом и ужином, иногда назначают еще забор крови через 90 мин после еды. При необходимости можно производить забор крови каждые 2-3 часа в течение суток, в том числе и ночью для выявления ночной гипогликемии и утром до еды для выявления утренней гипергликемии.
Доставка в лабораторию: Если взятие крови проводилось в отделении стационара лаборантом, то доставка биоматериала осуществляется медицинским лабораторным техником. Если взятие крови проводилось процедурной медицинской сестрой, то доставка биоматериала осуществляется в термосумке сразу после взятия крови.
Уровень эритроцитов
В норме составляет: у мужчин 4´10 12 – 5,1´10 12 , у женщин 3,7-4,7´10 12 .
Увеличение количества эритроцитов может быть связано с усилением эритропоэза, дыхательной недостаточностью, хроническом алкоголизме и др. Уменьшение количества эритроцитов может быть результатом их усиленного разрушения при гемолизе, при дефиците железа, витамина В 12 , при кровотечениях, опухолях и др.
Количество гемоглобина
В норме составляет 130-160 г/л у мужчин и 120-140 г/л у женщин.
Снижение гемоглобина наблюдается при различных анемиях.
Цветовой показатель
В норме колеблется от 0,85 до 1,1.
Изменяется при анемиях: при гипохромной анемии снижается до 0,5-0,7, при гиперхромной анемии превышает 1,1.
Диаметр эритроцитов
В норме 7,5 мк.
При патологических процессах может быть анизоцитоз-изменение диаметра эритроцитов: уменьшение диаметра эритроцитов (железодефицитная анемия), или его увеличение (В 12 –фолиеводефицитная анемия).
Форма эритроцитов
Изменяется при анемиях (пойкилоцитоз- различная форма эритроцитов).
Количество ретикулоцитов
В норме 2-12 %.
Количество лейкоцитов
В норме составляет 4,0-8,8 ´ 10 9 .
Повышение лейкоцитов более 9 ´ 10 9 - лейкоцитоз- наблюдается при инфекционных заболеваниях, воспалительных процессах, лейкозах и др.
Уменьшение (лейкопения) является признаком понижения иммунитета, вирусных инфекций, лучевой болезни и др.
Лейкоцитарная формула
В норме в общем количестве лейкоцитов выделяют:
Нейтрофилы (сегментоядерные-45-70%, палочкоядерные- 1-5%),
Базофилы (0-1%),
Эозинофилы (0-5%),
Лимфоциты (18-40%).
Количество тромбоцитов
В норме 180-320 ´10 9 . Повышение количества тромбоцитов- тромбоцитоз, уменьшение- тромбоцитопения
Показатели гемостаза
Время кровотечения – 2-4 мин.
Время свёртывания крови (капиллярной): начало-30 сек.-2 мин.; конец-3-5 мин.
Протромбиновый индекс
В норме 90-105% или 12-20 сек.
Белковый обмен
Общий белок сыворотки– 65-85 г/л.
Белковые фракции -
Альбумины- 56,5-66,5%,
A 1 -глобулины- 2,5-5,0%,
A 2 -глобулины- 5,1- 9,2 %,
B- глобулины- 8,1-12,2 %,
G- глобулины- 12,8- 19,0 %.
Фибриноген - 2-4 г/л.
Креатинин - 50-115 мкмоль/л.
Мочевина - 4,2-8,3 ммоль/л.
Клубочковая фильтрация - 80-120 мл/мин.
Канальцевая реабсорбция - 97-99%.
Углеводный обмен
Плазма- 4,2-6,1 ммоль/л,
Цельная капиллярная кровь-3,88- 5,55 ммоль/л.
Липидный обмен
Общие липиды – 4-8 ммоль/л.
Общий холестерин - менее 5,2 ммоль/л.
Липопротеиды высокой плотности- 0,9-1,9 ммоль/л.
Липопротеиды низкой плотности - менее 2,2 ммоль/л.
Пигменты
Общий билирубин - 8,5-20,5 мкмоль/л.
Прямой билирубин - 0- 5,1 мкмоль/л.
Ферменты
АЛТ (аланинаминотранфераза)- 28-190 ммоль/л,
АСТ (аспартатаминотранфераза)- 28-125 ммоль/л,
ЛДГ (лактатдегидрогеназа)- 220-1100 ммоль/л.
I. Подготовка к процедуре
1.Вымыть и высушить руки.
Для этого необходимо:
5.Проверить соблюдение пациентом ограничений в диете, учесть приём назначенных пациенту препаратов.
7.Подобрать и проверить все приспособления, используемые для взятия крови, удобно расположить их на рабочем столике.
II. Выполнение процедуры
При наложении жгута женщине не использовать руку на стороне масстэктомии.
11.Попросить пациента сжать кулак.
12.Продезинфицировать место венепункции.
13.Подождать до полного высыхания антисептика или просушить место венепункции стерильным сухим тампоном.
14.Надеть на шприц иглу, снять с иглы защитный колпачок.
15.Фиксировать вену.
16.Ввести иглу в вену.
17. Потянуть поршень на себя. Когда из канюли иглы покажется кровь, набрать необходимое количество крови.
18.Снять (ослабить) жгут, как только кровь начнет поступать в пробирку.
19. Набрать нужное количество крови, медленно вытягивая поршень шприца на себя.
20.Попросить пациента разжать кулак.
III. Окончание процедуры
21.Приложить сухую стерильную салфетку к месту венепункцию.
22.Извлечь иглу из вены.
23.Наложить давящую повязку или бактерицидный пластырь на место венепункции (на 5-7 мин).
24.Провести дезинфекцию использованного оборудования.
25.Убедиться в хорошем самочувствии пациента.
26.Перелить кровь из шприца через иглу в пробирку, указав на этикетке ФИО пациента, время взятия крови. Поставить свою подпись.
27.Транспортировать в соответствующие лаборатории промаркированные пробирки в специальных контейнерах с крышками (термосумках).
I. Подготовка к процедуре
1.Вымыть и высушить руки.
2.Пригласить пациента, провести его идентификацию.
Необходимо убедиться, что взятие крови будет проведено у пациента, указанного в направлении.
Для этого необходимо:
- спросить у пациента его имя, фамилию, дату рождения;
- сравнить эту информацию с указанной в направлении.
3.Зарегистрировать направление на анализ, промаркировать пробирки для взятия крови и бланк направления одним регистрационным номером.
4.Объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедуры, убедиться в наличии информированного согласия.
В доступной для пациента форме, с учетом его психологических особенностей, объяснить, что представляет собой процедура, какие неприятные ощущения и когда может испытать пациент. Такой разговор помогает снять эмоциональное напряжение, создать доверительную обстановку.
5.Проверить соблюдение пациентом ограничений в диете, учесть приём назначенных пациенту препаратов
6.Предложить/помочь пациенту занять удобное положение: сидя или лежа. Расположить руку пациента так, чтобы плечо и предплечье образовали прямую линию (под локоть положить клеёнчатую подушку).
7.Подобрать и проверить все приспособления, используемые для взятии крови, удобно расположить их на рабочем столике.
8.Надеть защитные очки, маску, перчатки.
Каждый пациент рассматривается как потенциально инфицированный!
II. Выполнение процедуры
9.Выбрать, осмотреть и пропальпировать место предполагаемой венепункции.
Чаще всего венепункцию проводят на локтевой вене.
10.Наложить жгут, проверить пульс на лучевой артерии.
Жгут накладывается на 7-10 см выше места венепункции на рубашку или пеленку.
При наложении жгута не использовать руку на стороне мастэктомии.
Необходимо помнить, что длительное наложение жгута (более 1 мин) может вызвать изменения концентрации белков, газов крови, электролитов, билирубина, показателей коагулограммы.
Пульс на лучевой артерии должен пальпироваться.
11.Взять иглу, снять белый колпачок, чтобы открыть иглу с клапаном.
12.Ввернуть закрытый резиновым клапаном конец иглы в держатель.
13.Попросить пациента сжать кулак.
Нельзя задавать для руки физическую нагрузку (энергичное сжимание и разжимание кулака), т.к. это может привести к изменениям концентрации в крови некоторых показателей.
Для усиления тока крови можно помассировать руку от запястья к локтю или приложить теплую влажную салфетку к месту венепункции на 5 мин.
14.Продезинфицировать место венепункции.
Обработка проводится не менее чем 2 салфетками/ватными шариками с кожным антисептиком, движениями в одном направлении, одновременно определяя наиболее наполненную вену.
Если рука пациента сильно загрязнена, использовать столько ватных шариков с антисептиком, сколько это необходимо.
15.Подождать до полного высыхания антисептика или просушить место венепункции стерильным сухим тампоном.
Не пальпировать вену после обработки! Если во время венепункции возникли сложности, и вена пальпировалась повторно, эту область нужно продезинфицировать снова.
16.Снять с иглы цветной защитный колпачок.
17.Фиксировать вену.Обхватить левой рукой предплечье пациента так, чтобы большой палец находился на 3-5 см ниже венепункции, натянуть кожу.
18.Ввести иглу в вену.
Игла с держателем вводится срезом вверх под углом 15º.
19.Вставить в пробирку держатель.
Пробирка вставляется в держатель со стороны её крышки. Большим пальцем надавите на дно пробирки, удерживая при этом ободок держателя указательным и средним пальцами. Старайтесь не менять руки, т.к. это может изменить положение иглы в вене.
Под действием вакуума кровь самостоятельно начнет набираться в пробирку.
Тщательно дозированный объём вакуума обеспечивает необходимый объём крови и точное соотношение кровь/реагент в пробирке.
При взятии проб крови у одного пациента в несколько пробирок, соблюдайте правильную последовательность заполнения пробирок.
1) кровь для микробиологических исследований
2) нативная кровь без антикоагулянтов для получения сыворотки (биохимия) – красная пробка, вакутейнерами с гелем или ускорителями свёртывания (гранулятом) – желтая пробка
3) цитратная кровь для коаугологических исследований – голубая пробка
4) кровь с ЭДТУК (ЭДТА, КЗА) для гематологических исследований - сиреневая (фиолетовая) пробка
5) кровь с ингибиторами гликолиза (фториды) для исследования глюкозы – серая пробка
6) кровь с литиевым гепарином (LH) для газов и электролитов.
20.Снять (ослабить) жгут, как только кровь начнет поступать в пробирку.
21.Попросить пациента разжать кулак.
22.Извлечь пробирку из держателя.
Пробирка извлекается после того, как в неё прекратила поступать кровь. Извлекать пробирку удобнее, упираясь большим пальцем в ободок держателя.
23.Перемешать содержимое наполненной пробирки.
Содержимое перемешивается путем переворачивания пробирки несколько раз для полного смешивания крови и наполнителя. Резкое встряхивание может привести к разрушению форменных элементов крови.
III. Окончание процедуры
24.Приложить сухую стерильную салфетку к месту венепункции.
25.Извлечь иглу из вены.
26.Наложить давящую повязку или бактерицидный пластырь на место венепункции (на 5-7 мин).
27.Провести дезинфекцию использованного оборудования.
28.Убедиться в хорошем самочувствии пациента.
29.Промаркировать взятые пробы крови, указав на этикетки ФИО пациента, время взятия крови. Поставить свою подпись.
30.Транспортировать в соответствующие лаборатории промаркированные пробирки в специальных контейнерах с крышками (термосумках).
Доставка в лабораторию: в термосумке сразу после взятия крови.
Лекция № 4 « Подготовка пациента к лабораторным методам исследования мочи, кала, мокроты».
Исследование мочи
Моча (urina) - биологическая жидкость, в составе которой из организма выводятся конечные продукты обмена веществ. Моча образуется путем фильтрации плазмы крови в почечных клубочках и обратного всасывания большинства растворенных в ней веществ и воды в канальцах.
Состав мочи может меняться в зависимости от выпитой жидкости и употребляемой пиши, от физического и нервно-психического состояния.
Анализ мочи дает представление не только о функции почек, но и других органов, таких как печень, сердце, желудочно-кишечный тракт и др.
Сбор мочи пациент проводит самостоятельно (исключение составляют дети и тяжелобольные).
Результаты исследования мочи во многом зависят от соблюдения условий ее сбора (время сбора, условия хранения, чистота посуды, соблюдение гигиенических правил, объем выпитой накануне воды, характера пищи и т.д.).
1. Выбор и подготовка лабораторной посуды
Моча должна быть собрана в сухую, чистую, хорошо отмытую от чистящих и дезинфицирующих средств посуду. Посуда моется проточной водой с содой. Желательно использовать емкость c широким горлышком и крышкой. По возможности нужно собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Если это не удается, желательно собрать ее в чистую посуду (тарелка, банка или др.), где раньше не было мочи (так как в горшках и суднах образуется осадок из фосфатов, который остается даже после ополаскивания и способствует разложению свежей мочи), а затем перелить всю полученную порцию в сосуд.
Лучше всего собирать мочу в специальные пластиковые контейнеры с крышками.
Режим питания
Пищевой режим должен быть обычным накануне и в день сбора мочи на исследование, объем свободной жидкости – 1,5-2 литра. Накануне сдачи анализа рекомендуется не употреблять овощи и фрукты, которые могут изменить цвет мочи (свекла, морковь и пр.).
Сбор мочи проводится после тщательного туалета наружных половых органов, чтобы в мочу не попали выделения из них. Наружные половые органы моют проточной или кипяченой водой с мылом, высушивают салфеткой или полотенцем.
Сбор мочи
Мужчины при мочеиспускании должны, полностью оттянув кожную складку, освободить наружное отверстие мочеиспускательного канала.
Женщины должны раздвинуть половые губы. Желательно закладывать тампон во влагалище перед сбором материала для предупреждения попадания в мочу лейкоцитов, бактерий, эритроцитов. Не следует производить сбор мочи во время менструации. Особое внимание следует уделять сбору мочи беременным женщинам.
Хранение мочи
Моча, собранная для анализа, может храниться не более 1,5 - 2 часов (обязательно на холоде при температуре 0-+4ºС), применение консервантов нежелательно, но допускается, если между мочеиспусканием и исследованием проходит более 2 часов.
Длительное стояние ведет к изменению физических свойств, размножению бактерий и разрушению элементов осадка мочи. При этом рН мочи будет сдвигаться к более высоким значениям из-за аммиака, выделяемого в мочу бактериями. Микроорганизмы потребляют глюкозу, поэтому при глюкозурии можно получить отрицательные или заниженные результаты.
Вся информация, передаваемая пациенту, должна быть ему понятна, поэтому следует избегать употребления медицинских терминов. От пациента нужно получить согласие на исследование.
При инструктировании пациент должен получить ответы на следующие вопросы:
Общий анализ мочи
Цель исследования:
Определение физических свойств мочи (цвет, прозрачность, реакцию, плотность);
Определение биохимических свойств мочи (глюкоза, белок и т.д.);
Исследование микроскопии осадка (форменные элементы крови, эпителий, соли и т.д.).
Нормальные значения:
Подготовка пациента к исследованию:
1.Проведение инструктажа.
2.Выдача лабораторной посуды.
3.Выдача направления.
Оснащение: контейнер для сбора мочи или чистая сухая банка (вместимость – 200 мл)
Взятие биологического материала:
Инструкция для пациента
Для получения достоверных результатов следует соблюдать следующие условия:
· по мере возможности исключить прием мочегонных препаратов;
· перед сбором мочи на анализ крайне нежелательны сильные физические нагрузки. В некоторых случаях это приводит к появлению белка в моче.
Для общего анализа собирают первую утреннюю порцию мочи. Утром после подъема пациенту необходимо провести тщательный уход наружных половых органов. Всю порцию утренней мочи собирают сразу после сна при свободном мочеиспускании. Нельзя брать мочу из судна, горшка.У здорового человека объем утренней порции мочи – 150-200 мл.
Доставка в лабораторию:
В амбулаторных условиях: Собранную мочу доставляют в лабораторию сразу не позднее 9.00 с направлением.
Проба мочи по Нечипоренко
Цель исследования: выявление соотношения между количеством эритроцитов и лейкоцитов в моче, оценка динамики этого показателя, выявление скрытого воспалительного процесса.
Нормальные значения: в норме 1 мл мочи содержит эритроцитов не более 1000, лейкоцитов не более 2000, гиалиновые цилиндры отсутствуют, допускается один в препарате.
Подготовка пациента к исследованию:
1.Проведение инструктажа.
2.Выдача лабораторной посуды.
3.Выдача направления.
Оснащение: контейнер для сбора мочи или чистая сухая банка (вместимостью 50-100 мл)
Взятие биологического материала:
Инструкция для пациента
Для исследования мочи по Нечипоренко собирают среднюю порцию мочи сразу после сна. Утром после подъема пациенту необходимо провести тщательный туалет наружных половых органов. Мочеиспускание начать в унитаз, прервать мочеиспускание, среднюю порцию собрать в лабораторную посуду, закончить мочеиспускание в унитаз. Нельзя брать мочу из судна, горшка.
Для исследования достаточно собрать 10 мл мочи.
Доставка в лабораторию:
В условиях стационара: мочу сдают на пост медицинской сестре.
В амбулаторных условиях: Собранную мочу доставляют в лабораторию сразу не позднее 9.00 с направлением.
Проба мочи по Амбурже
Инструкция для пациента
1) Утром пациент должен опорожнить мочевой пузырь в унитаз, т.к. ночная моча не собирается. Необходимо запомнить время опорожнения.
2) Через три часа пациент должен сдать всю мочу в выданную емкость. Перед сбором мочи, пациент должен выполнить тщательный гигиенический туалет наружных половых органов.
Доставка в лабораторию:
В условиях стационара: мочу сдают на пост медицинской сестре.
Проба мочи по Зимницкому
Цель исследования: определение концентрационной и выделительной функций почек
Нормальные значения:
Количество мочи – 1200-20000 мл.
Относительная плотность (удельный вес) – 1008 – 1024.
Ночной диурез – 1/3 от суммарного количества мочи, выделенной днём.
Общее количество мочи составляет 65-75% от выпитой за сутки жидкости.