Testimislaborid on osa sertifitseerimisprotsessist. Peab olema seaduslikult registreeritud. Sellises laboris peavad olema kõrgelt kvalifitseeritud töötajad ja akrediteerimiseks vajalikud seadmed.
Kaasaegsel ajastul on katselaboreid mitut tüüpi. Lisateavet meditsiinilaborite kohta saate https://www.mt.com/ru/ru/home/industries/Labs-Health.html Siin. Katselaborid on vajalikud järgmiste tegevusvaldkondade jaoks:
- Toit.
- Keemiline.
- Meditsiiniline.
Olemas ka elektrilabor. See on laborite jaoks uus kasutusvaldkond, kuna elektriseadmete testimine nõuab kalleid seadmeid. Kõige sagedamini on toiduainete uurimiseks vaja katselaboreid. Tänu neile on võimalik kindlaks teha teatud toote omadused, tuvastada selle valmistamisel mitmeid rikkumisi ning tuvastada kahjulikke ja mürgiseid aineid.
Ravimid läbivad eriti põhjaliku testimise. Iga komponenti tuleb uurida, sest inimese seisund sõltub ravimi toimest. Ilma laboriuuringuteta ei tohi ravimit müüa, sest nii ei saa seda ohutuks pidada. Ilma uuringute ja katseteta peetakse ravimit ohtlikuks ja võib kahjustada.
Toiduainetööstuse kontrolllaborid
Toiduainetööstuse laborid peavad vastama teatud nõuetele. Neid kasutatakse linnufarmides, kondiitritehastes ja piimatootmisettevõtetes. Peaaegu igas kaasaegses toiduettevõttes on selline labor. Rikkumiste tuvastamisel eemaldatakse toode tootmisest ja muudetakse valmistamise retsepti selliselt, et lõpuks valmiks inimorganismile ohutu toode.
Laborites on toote kvaliteedi kriteeriumid mikrobioloogilised ja füüsikalis-keemilised näitajad. Toote uurimine võib kesta mitu tundi kuni mitu päeva. Kõik oleneb toidu koostisosade hulgast ja uurimisastmest. Mõnel juhul on vaja toodet põhjalikumalt uurida.
Iga labor peab vastama kaasaegsetele nõuetele, ilma erivarustuseta ei saa seda registreerida ja avada. Testi edukal sooritamisel väljastab labor toote tootjale ametliku sertifikaadi. See on eduka kontrolli kohustuslik läbimine. Kui tootel avastatakse rikkumisi, siis sertifikaate ei väljastata.
Laboratooriumide tüübid, nende eesmärk. Kliiniline ja diagnostiline - bioloogiliste substraatide füüsikalis-keemiliste omaduste määramine ja mikroskoopia. Näiteks üldanalüüs (veri, uriin, röga, väljaheited), uriinianalüüsid Zimnitski ja Nechiporenko järgi, väljaheited peitvere jaoks, väljaheited helmintide munade jaoks. Biokeemiline - bioloogiliste substraatide keemiliste omaduste määramine. Näiteks maksa vereanalüüsid (üldvalgu-, bilirubiini-, tümooli- ja sublimaadianalüüsid), veri reumauuringuteks. Bakterioloogiline (kliinilise mikrobioloogia laboratoorium) - mikroobse koostise tuvastamine ja mikrofloora tuvastamine (veri steriilsuse, uriin biokultuuri jaoks, väljaheited soolerühma ja düsbakterioosi jaoks. Immunoloogiline - Uuringute läbiviimine mõnede nakkusetekitajate markerite, samuti looduslike antikehade kohta kaevu. teadaolevad bakterid ja viirused (veri HIV, hepatiit B, C jne).
Slaid 5 esitlusest “Õe osalemine patsiendi laboriuuringutes”Mõõdud: 720 x 540 pikslit, formaat: .jpg. Klassis kasutamiseks tasuta slaidi allalaadimiseks paremklõpsake pildil ja klõpsake nuppu "Salvesta pilt nimega...". Kogu esitluse “Õe osalemine patsiendi laboratoorses testimises.pptx” saate alla laadida 2619 KB suuruses ZIP-arhiivis.
Füüsika laborid
“Füüsika labor” - Moodulid – laboritööd. Kujundage eksperiment. Sõltuvalt määratud parameetritest teostab moodul animatsiooni ja arvutusi. Pärast katse läbiviimist määrake küveti pindala. Sissejuhatus. Festival “Infotehnoloogiate kasutamine õppetegevuses”. Interaktiivsed laboritööd füüsika kursusel 7.-11.klassile.
“Laboratoorsed tööd” - Füüsika laboritööde digitaalkogu Bioloogia ja ökoloogia laboritööde digitaalkogu* Keemia laboritööde digitaalkogu* ____________________________________________ * Arendusel. Esiülesannete lisamine kogu klassile. Metoodiliseks juhendiks õpetajatele mitmesuguste katsete läbiviimisel digianduritega laboritöökojana õpilastele tööde tegemiseks töövihikuna - õpilase tööleht kui redigeeritav avatud ressursside kogu õppetundideks valmistumiseks ja tundide planeerimiseks, mis võimaldab eksportida ja õppematerjalide import kui mugav kest, mis võimaldab korraldada õpilaste teadmiste kontrolli (koolitused, testid, eksamid).
"Eksperimentide demonstreerimine" - miks see juhtub? Kinnitame metallist joonlaua kruustangisse. Sunnitud vibratsioonid. Selgitage selle seadme tööpõhimõtet. Demonstratsioon viiakse läbi järgmises järjekorras: 1. Valmistage seadmeid, mis tekitavad õpilastes suurt huvi. Pärast joonlaua rõngasse sisestamist lööge sellega rõngast. Koonus liigub ülespoole, kuni selle otsad langevad väljalõigetesse.
“Füüsikakatsed” – magnetväljade spektrid. Tõhususe mõõtmine. Induktsioonvool. Aeg määratakse stopperi abil. Kuidas sõltub vabavõnkumiste periood ja sagedus? Induktsioonivoolu sõltuvus. Suhe jõudude hetkede vahel. Mida pikem on pikkus, seda madalam on sagedus. Voolu mõju võib olla erinev. Instrumentide näidud.
Kiirgusohu astme järgi jagunevad tööd lahtiste radioaktiivsete ainetega kolme klassi, olenevalt töökohal toimuvast aktiivsusest, radioaktiivse isotoobi radiotoksilisuse rühmast ja tehtava töö iseloomust.
Tavaliste keemiliste operatsioonide käigus avatud radioaktiivsete ainetega tehtud tööde klassifikatsioon on toodud tabelis. 13.
TABEL 13. Lahtiste radioaktiivsete ainetega tehtud tööde klassifikatsioon
Teist tüüpi keemiliste toimingute tööklassi kindlaksmääramiseks antud toksilisuse rühma isotoopide kasutamisel (vt lk 328) on tabelis toodud vastav väärtus. 13, korrutage parandusteguriga, mille väärtused on näidatud allpool:
Korrigeeriv
Protsessi koefitsiendi olemus
Vastavalt tööklassile peab laborites olema vastav varustus, samuti jagunevad need kolme klassi.
Kolmanda klassi tööde puhul ei ole laborite paigutusele erinõudeid, kuid parem on need läbi viia eraldi ruumides. Laboriseadmed peavad vastama tavaliste keemialaborite nõuetele. Lihtsaid ja rutiinseid kolmanda klassi toiminguid saab teha laborilaudadel ning keerukamaid tavalistes tõmbekappides asjakohaste ettevaatusabinõudega.
Teise klassi tööd tehakse eraldi, spetsiaalselt varustatud ruumides. Sellises laboris peaks olema spetsiaalne isotoopide hoidla, eraldi ruumid pakendamiseks, keemiatöödeks, mõõtmiste tegemiseks, dušš, kiirguskontrolli punkt, ruum toidu vastuvõtmiseks ja säilitamiseks. Laborites on suurendatud (5-10-kordne) õhuvahetus, paigaldatud spetsiaalsed kapid, karbid ja kaitsekambrid. Seinte, põrandate ja seadmete katmisele kehtivad erinõuded.
Radioaktiivsete ainete hoidla peab asuma eraldi ruumis ja olema varustatud seifidega radioaktiivsete ainete hoidmiseks, vahenditega raskete kaitsekonteinerite teisaldamiseks ning kohaga ainete eeltöötlemiseks kaugseadmetega.
Seifides asetatakse radioaktiivsed ained konteineritesse.
Laboris peavad olema kaitseekraanid (fikseeritud või kokkupandavad), kaugtöö vahendid (käsi- ja mehaanilised manipulaatorid, tangid jne).
Kõik teise klassi tööd tehakse tõmbekappides või kastides.
Esmaklassiliste tööde laborite kirjeldus ei kuulu meie ülesande hulka, kuna sellist tööd tehakse ainult aktiveerimisanalüüsi käigus, kasutades tuumareaktorit.
Kõik mikroorganismide mikrobioloogilised, biokeemilised ja molekulaarbioloogilised uuringud viiakse läbi spetsiaalsetes laborites, mille struktuur ja varustus sõltuvad uurimisobjektidest (bakterid, viirused, seened, algloomad), samuti nende sihtsuunast (teaduslikud uuringud, haiguse diagnoosimine). Inimeste ja loomade haiguste immuunvastuse ja serodiagnostika uuring viiakse läbi immunoloogilistes ja seroloogilistes (seerum - vereseerum) laborites.
Bakterioloogilised, viroloogilised, mükoloogilised ja seroloogilised (immunoloogilised) laborid on osa sanitaar-epidemioloogilistest jaamadest (SES), diagnostikakeskustest ja suurtest haiglatest. SES laborites teevad nad patsientidelt ja nendega kokkupuutuvatelt isikutelt saadud materjalide bakterioloogilisi, viroloogilisi ja seroloogilisi analüüse, uurivad bakterikandjaid ning viivad läbi vee, õhu, pinnase, toiduainete jms sanitaar- ja mikrobioloogilisi uuringuid.
Haiglate ja diagnostikakeskuste bakterioloogilistes ja seroloogilistes laborites viivad nad läbi uuringuid soole-, mäda-, hingamisteede ja muude nakkushaiguste diagnoosimiseks ning steriliseerimise ja desinfitseerimise mikrobioloogilist kontrolli.
Eriti ohtlike infektsioonide (katk, tulareemia, siberi katk jne) diagnoosimine toimub spetsiaalsetes tundlikes laborites, mille korraldus ja protseduur on rangelt reguleeritud.
Viroloogialaborid diagnoosivad viiruste põhjustatud haigusi (gripp, hepatiit, lastehalvatus jne), mõned bakterid - klamüüdia(ornitoos jne) ja riketsia(tüüfus, Q-palavik jne). Viroloogialaborite korraldamisel ja sisustamisel arvestatakse kõige rangemat aseptikat nõudvate viiruste, rakukultuuride ja kanaembrüotega töötamise spetsiifikat.
Mükoloogilistes laborites diagnoositakse haigusi, mida põhjustavad patogeensed seened ja mükooside patogeenid.
Laborid asuvad tavaliselt mitmes ruumis, mille pindala määrab töö maht ja sihtotstarve.
Iga labor pakub:
a) kastid üksikute patogeenirühmadega töötamiseks;
b) seroloogiliste uuringute ruumid;
c) ruumid nõude pesemiseks ja steriliseerimiseks, ettevalmistamiseks
toitainete söötme vähendamine;
d) vivaarium koos kastidega tervetele ja katseloomadele;
nykh;
e) testide vastuvõtmise ja väljastamise register.
Koos nende ruumidega on viroloogialaborites kastid uurimismaterjali spetsiaalseks töötlemiseks ja tööks rakukultuuridega.
Mikrobioloogiliste laborite seadmed
Laborid on varustatud mitmete kohustuslike instrumentide ja aparaatidega.
1. Instrumendid mikroskoopiaks: bioloogiline immersioonmikroskoop koos lisaseadmetega (ostsillaator, faasikontrastseade, tumevälja kondensaator jne), fluorestsentsmikroskoop.
2. Termostaadid ja külmikud.
3. Toitekeskkonna, lahuste jms valmistamise seadmed: seadmed destilleeritud vee tootmiseks (destilleerija), tehnilised ja analüütilised kaalud, pH-meetrid, filtreerimisseadmed, veevannid, tsentrifuugid.
4. Tööriistade komplekt mikroobidega manipuleerimiseks: bakterioloogilised aasad, spaatlid, nõelad, pintsetid jne.
5. Laboratoorsed klaasnõud: katseklaasid, kolvid, Petri tassid, madratsid, viaalid, ampullid, Pasteuri ja gradueeritud pipetid jne, seadmed puuvillase marli korgi valmistamiseks.
Suurtes diagnostikakompleksides on automaatsed analüsaatorid ja arvutipõhine süsteem saadud teabe hindamiseks.
Laboris on mikroskoopiliste preparaatide värvimiseks määratud ala, kus on spetsiaalsete värvainete lahused, alkohol, happed, filterpaber jne. Iga töökoht on varustatud gaasipõleti või piirituslambiga ja anumaga desinfitseeriva lahusega. Igapäevaseks tööks peavad laboris olema vajalikud toitekeskkonnad, keemilised reaktiivid, diagnostilised ravimid ja muud materjalid.
Suured laborid on termostaatilised ruumid mikroorganismide massiliseks kasvatamiseks ja seroloogilisteks reaktsioonideks. Kasvatamiseks, kultuuride säilitamiseks, laboratoorsete klaasnõude steriliseerimiseks ja muudel eesmärkidel kasutatakse järgmisi seadmeid.
1. Termostaat. Seade, milles hoitakse püsivat temperatuuri. Enamiku patogeensete mikroorganismide paljunemiseks on optimaalne temperatuur 37 "C. Termostaadid on õhk ja vesi.
2. Mikroanaerostaat. Seade mikroorganismide kasvatamiseks anaeroobsetes tingimustes.
3. C0 2 -inkubaator. Seade kindla gaasi koostisega püsiva temperatuuri ja atmosfääri loomiseks. Mõeldud atmosfääri gaasilise koostise suhtes nõudlike mikroorganismide kasvatamiseks.
4. Külmikud. Kasutatakse mikrobioloogilistes laborites mikroorganismide kultuuride, toitekeskkonna, vere, vaktsiinide, seerumite ja muude bioloogiliselt aktiivsete preparaatide säilitamiseks temperatuuril umbes 4 °C. Ravimite säilitamiseks temperatuuril alla 0 °C kasutatakse madala temperatuuriga külmkappe, milles hoitakse temperatuuri -20 °C või -75 °C.
5. Tsentrifuugid. Kasutatakse mikroorganismide, erütrotsüütide ja teiste rakkude settimiseks, heterogeensete vedelike (emulsioonid, suspensioonid) eraldamiseks. Laborites kasutatakse erinevate töörežiimidega tsentrifuuge.
6. Kuivatus- ja steriliseerimiskapp(Pasterahi). Mõeldud laboratoorsete klaasnõude ja muude kuumakindlate materjalide kuiva õhuga steriliseerimiseks.
7. Auru sterilisaator (autoklaav). Mõeldud steriliseerimiseks ülekuumendatud veeauruga (rõhu all). Mikrobioloogialaborites kasutatakse erineva mudeliga autoklaave (vertikaalsed, horisontaalsed, statsionaarsed, teisaldatavad).
BAKTERIOLOOGILISED, VIRUSOLOOGILISED, MÜKOLOOGILISED, IMMUNOLOOGILISED LABORID JA NENDE SEADMED. KAASAEGSE MIKROSKOOPI SEADME. MIKROSKOPIA MEETODID. MIKROORGANISMIDE MORFOLOOGIA UURIMISE MEETODID
Programm
1. Mikrobioloogiliste (bakterioloogiliste, viroloogiliste, mükoloogiliste) laborite töö- ja töökorraldus.
2. Mikrobioloogilise labori põhiinstrumendid ja seadmed.
3. Mikroskoobid ja mikroskoopilised seadmed. Sukelmikroskoobiga töötamise reeglid (eesmärgid).
Demonstratsioon
1. Mikrobioloogialaborites kasutatavate põhiinstrumentide ja seadmete projekteerimine ja kasutamine: termostaat, tsentrifuugid, autoklaav, kuivatuskapp, instrumendid ja riistad.
2. Bioloogilise mikroskoobi projekteerimine. Erinevad mikroskoopiameetodid: tumeväli, faasikontrast, fluorestsents, elektron.
3. Mikroobide (pärm ja bakterid) preparaadid erinevatel mikroskoopiameetoditel.
Ülesanne õpilastele
1. Perekonna pärmitaoliste seente mikroskoobi- ja eskiispreparaadid Candida kasutades erinevat tüüpi mikroskoopiaid.
Juhised
Mikrobioloogialaborites töötamise reeglid.
Tööd meditsiiniasutuse mikrobioloogilises laboris tehakse nakkushaiguste tekitajate - patogeensete mikroorganismidega.
Seetõttu peavad töötajad nakkuse eest kaitsmiseks rangelt järgima sisemisi eeskirju:
1. Kõik töötajad peavad töötama meditsiiniliste hommikumantlite, mütside ja eemaldatavate jalanõudega. Ilma hommikumantlita laborisse sisenemine on rangelt keelatud. Vajadusel panevad töötajad näole marli maski. Töö eriti ohtlike mikroobidega on reguleeritud erijuhistega ja seda tehakse tundlikes laborites.
2. Laboris on suitsetamine ja söömine keelatud.
3. Töökoht tuleb hoida eeskujulikult korras. Töötajate isiklikke asju tuleks hoida selleks ettenähtud kohas.
4. Kui nakatunud materjal satub kogemata lauale, põrandale või muudele pindadele, tuleb seda kohta põhjalikult desinfitseeriva lahusega töödelda.
5. Mikroobikultuuride säilitamine, jälgimine ja hävitamine peab toimuma vastavalt erijuhendile. Patogeensete mikroobide kultuurid registreeritakse spetsiaalses ajakirjas.
6. Pärast töö lõpetamist tuleb käed põhjalikult pesta ja vajadusel desinfitseeriva lahusega töödelda.
Mikroskoobid ja mikroskoopia meetodid
Riis. 1.1. Mikroskoobid.
a — Biolami mikroskoobi üldvaade; b — MBR-1 mikroskoop: 1 — mikroskoobi alus; 2 - objektitabel; 3 — kruvid objektilava liigutamiseks; 4 — klemmid, mis vajutavad ravimit; 5 - kondensaator; 6 — kondensaatori kronstein; 7 - kruvi, mis kinnitab kondensaatori hülsis; 8 — käepide kondensaatori liigutamiseks; 9 — kondensaatori iirisdiafragma käepide; 10 - peegel; 11 — toruhoidik; 12 — makromeetriline kruvikäepide; 13 — mikromeetri kruvikäepide; 14 — objektiivi revolver; 15 — läätsed; 16 — kaldtoru; 17 — kruvi toru randi kinnitamiseks; 18 - okulaar.
Mikrobioloogiliste uuringute jaoks kasutatakse mitut tüüpi mikroskoope (bioloogiline, fluorestseeruv, elektrooniline) ja spetsiaalseid mikroskoopiameetodeid (faasikontrast, tume väli).
Mikrobioloogilises praktikas kasutatakse kodumaiste kaubamärkide mikroskoope: MBR-1, MBI-2, MBI-3, MBI-6, "Bio-lam" R-1 jne (joonis 1.1). Need on mõeldud erinevate mikroobide kuju, struktuuri, suuruse ja muude omaduste uurimiseks, mille suurus on vähemalt 0,2-0,3 mikronit.
Sukeldusmikroskoopia
Kasutatakse meetodi eraldusvõime suurendamiseks valgusmikroskoopia. Valgusoptilise mikroskoopiasüsteemi eraldusvõime määratakse nähtava valguse lainepikkuse ja süsteemi numbrilise ava järgi. Numbriline ava mõõdab objektiivi siseneva valguse maksimaalse koonuse nurka ja see sõltub objekti ja objektiivi vahelise keskkonna optilistest omadustest (murdumisvõimest). Objektiivi kastmine keskkonda (mineraalõli, vesi), mille murdumisnäitaja on klaasile lähedane, hoiab ära valguse hajumise objektilt.
Riis. 1.2. Kiirte tee keelekümblussüsteemis, n on murdumisnäitaja.
Riis. 1.3. Kiirte tee tumevälja kondensaatorites, a - paraboloid-kondensaator; b — kardioidkondensaator; 1 - objektiiv; 2 - keelekümblusõli; 3 - ravim; 4 - peegelpind; 5 - diafragma.
Sel viisil saavutatakse arvulise ava suurenemine ja vastavalt ka eraldusvõime suurenemine. Sukeldusmikroskoopia jaoks kasutatakse spetsiaalseid märgiga varustatud immersioonobjektiive (MI - õliimmersioon, VI - vesiimmersioon). Sukelmikroskoobi maksimaalne eraldusvõime ei ületa 0,2 mikronit. Kiirte tee sukeldussüsteemis on näidatud joonisel fig. 1.2.
Mikroskoobi üldise suurenduse määrab objektiivi suurenduse ja okulaari suurenduse korrutis. Näiteks 90-kordse sukeldusobjektiiviga ja 10-kordse okulaariga mikroskoobi suurendus on: 90 x 10 = 900.
Mikroskoopia läbiva valgusega (erevälja mikroskoopia) kasutatakse värviliste objektide uurimiseks fikseeritud ettevalmistustes.
Tumevälja mikroskoopia. Seda kasutatakse mikroobide intravitaalseks uurimiseks looduslikes värvimata preparaatides. Tumevälja mikroskoopia põhineb valguse difraktsiooni nähtusel vedelikus hõljuvate osakeste külgvalgustuse korral ( Tyndalli efekt). Efekt saavutatakse paraboloid- või kardioidkondensaatori abil, mis asendab bioloogilises mikroskoobis tavakondensaatorit (joonis 1.3). Selle valgustusmeetodi korral satuvad objektiivi ainult objekti pinnalt peegelduvad kiired. Selle tulemusena on tumedal taustal (valgustamata vaateväli) nähtavad eredalt helendavad osakesed. Sel juhul on ravimil joonisel fig. 1.4, b (siseküljel).
Faaskontrastmikroskoopia. Mõeldud kohalike ravimite uurimiseks. Faasikontrastseade võimaldab läbi mikroskoobi näha läbipaistvaid objekte. Valgus läbib erinevaid bioloogilisi struktuure erineva kiirusega, mis sõltub objekti optilisest tihedusest. Selle tulemusena toimub valguslaine faasi muutus, mida silm ei taju. Faasiseade, sealhulgas spetsiaalne kondensaator ja lääts, tagab valguslaine faasi muutuste muutmise nähtavateks amplituudimuutusteks. Sel viisil saavutatakse objektide optilise tiheduse erinevuse suurenemine. Nad omandavad suure kontrasti, mis võib olla positiivne või negatiivne. Positiivne faasikontrast on objekti tume kujutis eredas vaateväljas, negatiivne faasikontrast on objekti hele kujutis tumedal taustal (vt joon. 1.4; sisestus).
Faaskontrastmikroskoopia jaoks kasutatakse tavalist mikroskoopi ja täiendavat faasikontrastseadet KF-1 või KF-4 (joonis 1.5), samuti spetsiaalseid valgustajaid.
Luminestsentsmikroskoopia (või fluorestsentsmikroskoopia). Põhineb fotoluminestsentsi fenomenil.
Luminestsents- ainete kuma, mis tekib väliskiirguse mõjul: valgus, ultraviolettkiirgus, ioniseeriv jne. Fotoluminestsents – objekti luminestsents valguse mõjul. Kui valgustate luminestsentsobjekti sinise valgusega, kiirgab see punaseid, oranže, kollaseid või rohelisi kiiri. Tulemuseks on objekti värviline pilt.
Riis. 1.5. Faasikontrastseade, a - faasi läätsed; b - abimikroskoop; c - faasikondensaator.
Kiirgava valguse lainepikkus (luminestsentsi värvus) sõltub luminestsentsaine füüsikalis-keemilisest struktuurist.
Esmane bioloogiliste objektide luminestsents (oma, või bioluminestsents) on täheldatud ilma eelneva värvimiseta, mis on tingitud tema enda luminestsentsainete olemasolust, sekundaarne (indutseeritud) - tekib spetsiaalsete luminestsentsvärvidega preparaatide värvimise tulemusena - fluorokroomid(akridiinoranž, auromiin, korüfosfiin jne). Luminestsentsmikroskoopial on tavapäraste meetoditega võrreldes mitmeid eeliseid: tänu suurele kontrastsusele on võimalik uurida elusaid mikroobe ja tuvastada neid väikeses kontsentratsioonis uuritavas materjalis.
Laboratoorses praktikas kasutatakse fluorestsentsmikroskoopiat laialdaselt paljude mikroobide tuvastamiseks ja uurimiseks.
Elektronmikroskoopia. Võimaldab teil jälgida objekte, mille mõõtmed jäävad valgusmikroskoobi eraldusvõimest kaugemale (0,2 mikronit). Elektronmikroskoopi kasutatakse viiruste, erinevate mikroorganismide peenstruktuuri, makromolekulaarsete struktuuride ja muude submikroskoopiliste objektide uurimiseks. Valguskiired asenduvad sellistes mikroskoopides elektronide vooluga, mille lainepikkus on teatud kiirendustel umbes 0,005 nm, s.o. peaaegu 100 000 korda lühem kui nähtava valguse lainepikkus. Elektronmikroskoobi kõrge eraldusvõime, ulatudes 0,1-0,2 nm-ni, võimaldab kogu kasulikku suurendust kuni 1 000 000.
Koos poolläbipaistva tüüpi seadmetega kasutavad nad skaneerivad elektronmikroskoobid, objekti pinnast reljeefse kujutise pakkumine. Nende seadmete eraldusvõime on oluliselt madalam kuiidel.
Mikroskoobiga töötamise reeglid
Iga valgusmikroskoobiga töötamine hõlmab vaatevälja ja proovi õige valgustuse seadistamist ning selle mikroskoopiat erinevate läätsedega. Valgustus võib olla loomulik (päevavalgus) või kunstlik, mille jaoks kasutatakse spetsiaalseid valgusallikaid - erinevat marki valgusteid.
Keelekümblusläätsega proovide mikroskoopia tegemisel peaksite rangelt järgima teatud järjekorda:
1) kandke slaidil valmistatud ja peitsitud määrdumisele tilk immersiooniõli ja asetage see lavale, kinnitades see klambritega;
2) keera revolver sukelläätse märgini 90x või 10Ох;
3) langetage mikroskoobi toru ettevaatlikult, kuni lääts on sukeldatud õlitilga sisse;
4) määrake makromeetrilise kruvi abil ligikaudne fookus;
5) teostada preparaadi lõplik teravustamine mikromeetri kruviga, keerates seda sees ainult üks pööre.Ärge laske objektiivil kokku puutuda
paratoomia, kuna see võib põhjustada katteklaasi või objektiiviläätse eesmise läätse purunemist (immersioonobjektiivi vaba kaugus 0,1-1 mm).
Pärast mikroskoobi töö lõpetamist on see vajalik eemaldage sukelläätselt õli ja viige revolver väikesele 8x objektiivile.
Tumevälja ja faasikontrastmikroskoopia jaoks kasutatakse natiivseid preparaate ("purustatud" tilk vms, vt teema 2.1); mikroskoop 40x objektiiviga või spetsiaalne immersioonobjektiiv iirisdiafragmaga, mis võimaldab reguleerida numbrilist ava vahemikus 1,25 kuni 0,85. Klaasklaaside paksus ei tohi ületada 1 - 1,5 mm, katteklaaside paksus - 0,15-0,2 mm.
Laboratooriumide tüübid, nende eesmärk
Kliiniline ja diagnostiline
Bioloogiliste substraatide füüsikalis-keemiliste omaduste määramine (näiteks vere, uriini, röga üldanalüüs;
Biokeemiline vereanalüüs: kolesterool, üldvalk, bilirubiin, varjatud vere väljaheited, helmintide munad, algloomad)
Biomaterjalide transportimiseks laborisse kasutatakse spetsiaalseid mahuteid (ühekordseid) või puhtaid ja kuivi klaasnõusid.
Bakterioloogiline
Mikroobse koostise tuvastamine ja mikrofloora tuvastamine (näiteks uriin steriilsuse tagamiseks, väljaheited soolestiku rühma jaoks, kurgu tampoon difteeria kahtluse korral)
Õde saab materjali kogumiseks bakterioloogialaboris ettevalmistatud steriilsed anumad.
Immunoloogiline/viroloogiline
Mõnede nakkusetekitajate markerite, samuti laialt levinud bakterite ja viiruste (veri HIV, B- ja C-hepatiidi, RW-nakkuse) looduslike (normaalsete) antikehade uurimine.
Biomaterjali transportimiseks kasutatakse spetsiaalseid laboratoorseid klaasnõusid)
Materjal laboriuuringuteks– need on erinevad bioloogilised vedelikud
(substraadid):
- veri, selle komponendid (plasma, punased verelibled)
- maomahl
- sapi
- röga
- efusioonivedelikud (eksudaat, transudaat)
- biopsiaga saadud parenhümaalsete organite kude
JÄTA MEELDE!
- Enne bioloogilise substraadi võtmist on vajalik saada patsiendi teadlik nõusolek protseduuri läbiviimiseks.
- Eksamitulemuste konfidentsiaalsus tuleb säilitada.
TEADA!
Bioloogilise materjali uurimise kiireloomulisust tähistab sümbol “CITO”.
Laboriklaasid, biomaterjali transport
Klaasnõud, mida biomaterjali kogumiseks kasutatakse endiselt laialdaselt, ei suuda tagada materjali hermeetiliselt suletud ja usaldusväärset säilitamist ning proovide käsitsemise lihtsust.
Koguma uriin, väljaheited, röga eelistatav on kasutada konteinereid (joonis 1).
Konteinerid biomaterjali kogumiseks
Mahutid on gradueeritud vahemikus 30 kuni 100 ml. Keermestatud kaaned tagavad konteinerite õhutiheduse, mis vastab biomaterjalide transportimise ja ladustamise nõuetele. Väljaheidete konteinerid on varustatud spaatliga.
Konteinerite kasutamise eelised:
Spetsialiseerimata konteinerite leidmise ja töötlemise probleem on kadunud;
Biomaterjali on mugav transportida osakondadest laborisse (välditakse pritsimist ja aurustumist);
Võõrlisandite hulk uuritud biomaterjalis vähenes.
Bakterioloogiliste uuringute jaoks mõeldud laboriklaasidele kehtivad erinõuded.
Bakterioloogia– otsene meetod patogeenide kasvatamiseks toitekeskkonnas, millele järgneb kasvanud kolooniate arvu loendamine, patogeeni tüübi ja selle tundlikkuse määramine antibakteriaalsete ravimite suhtes.
Riis. 2. Steriilsed tampooni kogumistuubid
Bakterioloogiliseks uurimiseks mõeldud proovide võtmine toimub steriilsetes laborikonteinerites (joonis 2).
Vereproovid kogutakse vaakumtuubidesse (joonis 3) Kats võib sisaldada täiteaineid (reaktiive ja muid lisandeid). Korgi värvus sõltub testi tüübist ja katseklaasis olevate reaktiivide koostisest.
Joonis 3. Vaakumtorud
Biomaterjali transporditakse suletud konteinerites, termokottides (joon. 4), mis alluvad desinfitseerimistöötlusele. Transpordi ajal pannakse saatedokumentatsioon pakendisse, mis välistab biomaterjaliga saastumise võimaluse. Saatelehti ei tohi panna verega katseklaasi.
Riis. 4. Transpordikonteinerid (A – termokott, B – konteiner vere transportimiseks, C – konteiner uriini transportimiseks)
Juhiste registreerimine
Uurimistöö materjal toimetatakse laborisse kaasasoleva ankeediga, kus on märgitud: uuringu nimetus, biomaterjal; perekonnanimi, eesnimi, patsiendi isanimi, sugu, vanus; kahtlustatav diagnoos; uuringu tellinud arsti perekonnanimi, eesnimi, isanimi; biomaterjali kogumise ja laborisse toimetamise kuupäev ja kellaaeg (joonis 5).
Riis. 5. Näidisjuhised
Kuni viimase ajani sisestati uurimistulemused suunamisvormidesse käsitsi.
Kaasaegsed analüsaatorid võimaldavad teil välja printida uuringu tulemused ja näitajate normid.
Vereanalüüsi
Veri koosneb vedelast osast - plasmast ja moodustunud elementidest - vererakkudest. Rakud hõivavad ligikaudu 45% kogu veremahust (hematokrit). Vere kogumaht inimkehas on 4,5-5,0 liitrit. Veri, pestes kõiki keharakke ja kudesid, osaleb toidu ja hapniku transportimisel, ainevahetuse lõpp-produktide eemaldamisel jne. Plasma sisaldab valke, ensüüme, hormoone, mineraale jne. Laboratoorsete uuringute jaoks kasutatakse nii plasmat ennast, mis on saadud pärast vererakkude eraldamist tsentrifuugimisega, kui ka seerumit, mis on pärast vere hüübimist (hüübe teket) järelejäänud vedel osa.
Veenist võtab verd õde ja sõrmest meditsiinilaborant.
Tarnimine laborisse.
Hemostaasi näitajad
Protrombiini indeks
90-105% või 12-20 sek.
pole nõutud. Esitatakse ainult teave eelseisva manipuleerimise kohta.
Varustus: kõike sõrmest vere võtmiseks, stopper, kapillaar, klaasklaas.
Veri kogutakse sõrmest tavapäraste reeglite järgi.
Meetod üks– peale sõrme torkimist ja esimese veretilga eemaldamist tõmmatakse kapillaari 2–3 cm verd.Märgitakse kellaaeg. Kapillaar pööratakse nii, et veresammas liigub, kuid ei läheneks serva lähedale. Niipea, kui veresammas kapillaari liikumisel peatub, märgitakse aeg uuesti. Seega on hüübimisaeg aeg vere kogumise hetkest kuni veresamba seiskumiseni.
Teine meetod- pärast sõrme torkimist ja esimese veretilga eemaldamist tilgub veri slaidile või kellaklaasile. Kellaaeg on märgitud. Seejärel kontrollitakse tilka nõelaga fibriini esimeste kiudude olemasolu suhtes. Niipea, kui nõel on niidist tõmmatud, märgitakse kellaaeg uuesti.
Tarnimine laborisse: pole vajalik, tehakse analüüs otse verevõtukohas.
Glükoosi taluvuse test
Glükoosi taluvuse (glükoosi laadimise) test(GTT, GNT, “suhkrukoormus”) on test teatud glükoosiannuse sisseviimisega, et testida kõhunäärme funktsiooni glükeemia (vere glükoosisisalduse) taseme vähendamiseks 2 tunni jooksul pärast manustamist.
Pankrease beeta-rakud toodavad hormooni insuliini, mis alandab veresuhkru taset. Diabeedi kliinilised sümptomid ilmnevad, kui rohkem kui 80-90% kõigist beetarakkudest.
Glükoosi taluvuse test tehakse siis, kui normaalne ja piiripealne(normi ülemisel piiril) vere glükoositasemed, et eristada suhkurtõbe ja glükoositaluvuse halvenemist* (prediabeet). Tolerantsus- suurenenud tolerantsus, ükskõiksus.
Uuringu eesmärk: süsivesikute ainevahetuse hindamine tühja kõhu ja treeningujärgse veresuhkru taseme määramise põhjal. See test võimaldab teil tuvastada suhkurtõve varjatud vorme ja glükoositaluvuse häireid.
Normaalväärtused:
Tühja kõhuga:
norm:< 5,6 ммоль/л
· tühja kõhu glükoosisisalduse häire: 5,6–6,0 mmol/l
suhkurtõbi: ≥ 6,1 mmol/l
2 tunni pärast:
norm:< 7,8 ммоль/л
· glükoositaluvuse häire: 7,8-10,9 mmol/l
suhkurtõbi: ≥ 11 mmol/l
Uuringuks valmistumine:
1. Juhtimisjuhised.
2.Juhiste väljastamine.
3. Uuringuks valmistumisel peate eelneva 3 päeva jooksul järgima tavalist toitumist, piiramata süsivesikuid (suhkur, magusad joogid, puuviljad jne).
4. 3 päeva enne analüüsi on vaja lõpetada ravimite võtmine: C-vitamiin, salitsülaadid, suukaudsed kontratseptiivid, kortikosteroidid (ravimiravi katkestamise otsuse teeb raviarst).
5. Täielik söömisest hoidumine verevõtu eelõhtul peaks kestma vähemalt 8 tundi, kuid mitte rohkem kui 14 tundi (pärast viimast söögikorda).
6. Testi eelõhtul on vaja välistada füüsiline aktiivsus, stressirohke olukorrad ja füsioterapeutilised protseduurid.
Bioloogilise materjali võtmine: teostab meditsiinilaborant, õe ülesanne on patsiendi juhendamine tulemuse usaldusväärsust tagavate tingimuste järgimise vajadusest.
1. Läbi viidud hommikul, rangelt tühja kõhuga! Enne testi määratakse glükoosi tase - glükoosisisalduse korral on võimalik glükoositaluvuse test mitte rohkem kui 6,7 mmol/l .
2. Pärast seda võtab patsient eelnevalt valmistatud ja põhjalikult segatud lahuse, mis sisaldab 75 g kuiva glükoosi 200 ml vee kohta. Lahus tuleb ära juua 5 minuti jooksul (mitte rohkem!).
3. Uuringu ajal ei tohi te juua vedelikke (v.a vesi), süüa ega suitsetada. Pärast vere võtmist peate 2 tundi puhkama (lamama või istuma).
4. 2 tundi pärast glükoosilahuse võtmist võetakse uuesti verd.
Tarnimine laborisse: Vere võtmine toimub laboris. Kui veri võeti haigla osakonnas, tarnib biomaterjali meditsiinilaborant.
Glükeemiline profiil
Glükeemiline profiil- glükeemia (vere glükoosisisalduse) kõikumine päeva jooksul ravi mõjul. Glükeemiline profiil võimaldab meil teha järeldusi glükoosisisaldust alandavate ravimite efektiivsuse kohta.
Protseduur viiakse läbi vastavalt arsti ettekirjutusele. Arst määrab vereproovide võtmise sageduse (3 kuni 8 korda päevas).
Uuringu eesmärk: glükoositaseme kõikumiste tuvastamine päeva jooksul, et valida insuliini või tablettidena hüpoglükeemiliste ainete annus.
Näidustused: 1. ja 2. tüüpi suhkurtõbi.
Normaalväärtused:
I tüüpi suhkurtõve korral loetakse glükoosisisaldus kompenseerituks, kui selle kontsentratsioon tühja kõhuga ja päeva jooksul ei ületa 10 mmol/l. Selle haigusvormi korral on lubatud väike suhkru kadu uriinis - kuni 30 g / päevas.
II tüüpi suhkurtõbi loetakse kompenseerituks, kui glükoosi kontsentratsioon veres ei ületa hommikul 6,0 mmol/l ja päeval kuni 8,25 mmol/l. Glükoosi uriinis ei tohiks tuvastada
Uuringuks valmistumine:
1. Juhtimisjuhised.
2.Juhiste väljastamine.
3. Patsient on 3 päeva enne protseduuri ja uuringu päeval tavapärasel vee- ja toidurežiimil.
4. Kõik ravimid, välja arvatud need, mis on vajalikud tervislikel põhjustel, on välistatud.
5. Uuringu päeval jäetakse ära kõik meditsiinilised ja diagnostilised protseduurid, füüsiline ja psühho-emotsionaalne stress
Bioloogilise materjali võtmine: läbi laboritehnik (1. meetod) või protseduuriõde (2. meetod). Õe ülesanne on juhendada patsienti tulemuse usaldusväärsust tagavate tingimuste täitmise vajadusest.
1. meetod: meditsiinilabori tehnik võtab sõrmest verd.
2. meetod: protseduuriõde võtab veenist verd.
Vereproovid võetakse pool tundi enne põhitoidukordi, st enne hommiku-, lõuna- ja õhtusööki, mõnikord määratakse teine vereproov 90 minutit pärast sööki. Vajadusel võib verd võtta iga 2-3 tunni tagant päevasel ajal, sh öösel öise hüpoglükeemia tuvastamiseks ja hommikul enne sööki hommikuse hüperglükeemia tuvastamiseks.
Tarnimine laborisse: Kui haigla osakonnas viis verevõtmist laborant, siis biomaterjali kohaletoimetamise viib läbi meditsiinilaborant. Kui vere võttis protseduuriõde, siis biomaterjal tarnitakse kohe pärast vere võtmist termokotis.
Punaste vereliblede tase
Tavaliselt on see: meestel 4´10 12 - 5,1´10 12, naistel 3,7-4,7´10 12.
Erütrotsüütide arvu suurenemist võib seostada erütropoeesi suurenemise, hingamispuudulikkuse, kroonilise alkoholismi jne tekkega. Erütrotsüütide arvu vähenemine võib olla tingitud nende suurenenud hävimisest hemolüüsi ajal koos raua, B12-vitamiini puuduse ja verejooksuga. , kasvajad jne.
Hemoglobiini kogus
Tavaliselt on see meestel 130-160 g/l ja naistel 120-140 g/l.
Hemoglobiinisisalduse langust täheldatakse mitmesuguste aneemiate korral.
Värvi indeks
Tavaliselt on see vahemikus 0,85 kuni 1,1.
Muutused aneemiaga: hüpokroomse aneemia korral väheneb see 0,5-0,7-ni, hüperkroomse aneemiaga ületab 1,1.
Punaste vereliblede läbimõõt
Tavaline on 7,5 mikronit.
Patoloogiliste protsesside korral võib esineda anisotsütoos - erütrotsüütide läbimõõdu muutus: erütrotsüütide läbimõõdu vähenemine (rauavaegusaneemia) või suurenemine (B 12 - folaadi puudulikkuse aneemia).
Punaste vereliblede kuju
Muutused aneemiaga (poikilotsütoos - punaste vereliblede erinevad kujud).
Retikulotsüütide arv
Normaalne on 2-12%.
Valgevereliblede arv
Tavaliselt on see 4,0–8,8 × 10 9.
Leukotsüütide arvu suurenemist üle 9 × 10 9 - leukotsütoos - täheldatakse nakkushaiguste, põletikuliste protsesside, leukeemia jne korral.
Vähenemine (leukopeenia) on märk immuunsuse vähenemisest, viirusinfektsioonidest, kiiritushaigusest jne.
Leukotsüütide valem
Tavaliselt jagatakse leukotsüütide koguarv järgmisteks osadeks:
Neutrofiilid (segmenteeritud - 45-70%, riba - 1-5%),
basofiilid (0-1%),
eosinofiilid (0-5%),
Lümfotsüüdid (18-40%).
Trombotsüütide arv
Tavaliselt 180-320 ´10 9. Trombotsüütide arvu suurenemine - trombotsütoos, vähenemine - trombotsütopeenia
Hemostaasi näitajad
Verejooksu aeg - 2-4 minutit.
Vere hüübimisaeg (kapillaar): algus - 30 sekundit - 2 minutit; lõpp - 3-5 min.
Protrombiini indeks
Tavaliselt 90-105% või 12-20 sekundit.
Valkude ainevahetus
Üldine vadakuvalk – 65-85 g/l.
Valgu fraktsioonid -
Albumiin - 56,5-66,5%,
A1-globuliinid - 2,5-5,0%,
A2-globuliinid - 5,1-9,2%,
B-globuliinid - 8,1-12,2%,
G-globuliinid - 12,8-19,0%.
Fibrinogeen - 2-4 g/l.
Kreatiniin - 50-115 µmol/l.
Karbamiid - 4,2-8,3 mmol / l.
Glomerulaarfiltratsioon - 80-120 ml/min.
Torukujuline reabsorptsioon - 97-99%.
Süsivesikute ainevahetus
Plasma - 4,2-6,1 mmol/l,
Täiskapillaarveri - 3,88-5,55 mmol/l.
Lipiidide ainevahetus
Lipiidide üldsisaldus – 4-8 mmol/l.
Üldkolesterool on alla 5,2 mmol/l.
Suure tihedusega lipoproteiinid - 0,9-1,9 mmol / l.
Madala tihedusega lipoproteiinid - alla 2,2 mmol/l.
Pigmendid
Üldbilirubiin - 8,5-20,5 µmol/l.
Otsene bilirubiin - 0-5,1 µmol/l.
Ensüümid
ALT (alaniini aminotransferaas) - 28-190 mmol/l,
AST (aspartaataminotransferaas) - 28-125 mmol/l,
LDH (laktaatdehüdrogenaas) - 220-1100 mmol/l.
I. Protseduuri ettevalmistamine
1.Pese ja kuivata käed.
Selleks vajate:
5. Kontrollige patsiendi toitumispiirangute järgimist ja võtke arvesse patsiendile määratud ravimeid.
7. Valige ja kontrollige kõik verevõtmiseks kasutatavad seadmed, asetage need mugavalt töölauale.
II. Protseduuri läbiviimine
Žguti paigaldamisel ei tohiks naine kasutada massektoomia küljel olevat kätt.
11.Paluge patsiendil rusikas kokku suruda.
12. Desinfitseerige veenipunktsiooni koht.
13.Oodake, kuni antiseptik on täielikult kuivanud, või kuivatage veenipunktsiooni koht steriilse kuiva tampooniga.
14. Asetage nõel süstlale ja eemaldage nõelalt kaitsekork.
15. Kinnitage veen.
16.Sisestage nõel veeni.
17. Tõmmake kolbi enda poole. Kui nõela kanüülist ilmub verd, tõmmake vajalik kogus verd.
18. Eemaldage (lõdvendage) žgutt niipea, kui veri hakkab katseklaasi voolama.
19. Tõmmake vajalik kogus verd, tõmmates süstla kolbi aeglaselt enda poole.
20.Paluge patsiendil rusikas lahti võtta.
III. Protseduuri lõpp
21.Kandke veenipunktsiooni kohale kuiv steriilne riie.
22.Eemaldage nõel veenist.
23.Kinnitage veenipunktsiooni kohale surveside või bakteritsiidne plaaster (5-7 minutiks).
24. Desinfitseerige kasutatud seadmed.
25. Veenduge, et patsiendi tervis on hea.
26. Valage süstlast veri läbi nõela katseklaasi, märkides etiketile patsiendi nime ja verevõtu aja. Rakenda oma allkiri.
27. Transpordi märgistatud katseklaasid vastavatesse laboritesse spetsiaalsetes kaanega konteinerites (termokottides).
I. Protseduuri ettevalmistamine
1.Pese ja kuivata käed.
2. Kutsuge patsient ja tuvastage ta.
Vajalik on tagada, et saatekirjas märgitud patsiendile tehakse verevõtt.
Selleks vajate:
- küsige patsiendilt tema nime, perekonnanime, sünniaega;
- võrrelge seda teavet suunal näidatud andmetega.
3. Registreeri analüüsi saatekiri, märgi verevõtutorud ja saateleht sama registreerimisnumbriga.
4. Selgitage patsiendile eelseisva protseduuri eesmärki ja kulgu, veenduge teadliku nõusoleku olemasolus.
Selgitage patsiendile kättesaadavas vormis, võttes arvesse tema psühholoogilisi iseärasusi, milline on protseduur, milliseid ebameeldivaid aistinguid patsient võib kogeda ja millal. Selline vestlus aitab leevendada emotsionaalset pinget ja luua usaldusliku keskkonna.
5. Kontrollige patsiendi toitumispiirangute järgimist, arvestage patsiendile määratud ravimitega
6. Paku/aita patsiendil võtta mugav asend: istudes või lamades. Asetage patsiendi käsivars nii, et õlg ja käsivars moodustaksid sirge joone (pane küünarnuki alla õliriidest padi).
7. Valige ja kontrollige kõik verevõtmiseks kasutatavad seadmed, asetage need mugavalt töölauale.
8. Kandke kaitseprille, maski ja kindaid.
Iga patsienti peetakse potentsiaalselt nakatunuks!
II. Protseduuri läbiviimine
9. Valige, uurige ja palpeerige kavandatava veenipunktsiooni koht.
Kõige sagedamini tehakse veenipunktsioon kubitaalveenil.
10.Kinnitage žgutt ja kontrollige radiaalse arteri pulssi.
Žgutt kantakse särgile või mähkmele 7-10 cm veenipunktsioonikohast kõrgemale.
Žguti paigaldamisel ärge kasutage kätt mastektoomia küljel.
Tuleb meeles pidada, et žguti pikaajaline kasutamine (üle 1 minuti) võib põhjustada muutusi valkude, veregaaside, elektrolüütide, bilirubiini ja koagulogrammi parameetrites.
Radiaalne pulss peaks olema palpeeritav.
11.Võtke nõel ja eemaldage valge kate, et avada nõel koos ventiiliga.
12. Keerake kummiklapiga suletud nõela ots hoidikusse.
13.Paluge patsiendil rusikas kokku suruda.
Sa ei saa panna oma käele füüsilist pinget (jõuliselt rusikast kokku surudes ja lahti harutades), sest see võib põhjustada muutusi teatud parameetrite kontsentratsioonis veres.
Verevoolu suurendamiseks võite masseerida oma kätt randmest küünarnukini või kanda veenipunktsiooni kohale sooja niiske lapiga 5 minutiks.
14. Desinfitseerige veenipunktsiooni koht.
Ravi viiakse läbi vähemalt 2 naha antiseptikumiga salvrätiku/vatipalliga, liigutades ühes suunas, määrates samaaegselt enim täidetud veeni.
Kui patsiendi käsi on väga määrdunud, kasutage nii palju vatitükke koos antiseptikuga kui vaja.
15.Oodake, kuni antiseptik on täielikult kuivanud, või kuivatage veenipunktsiooni koht steriilse kuiva tampooniga.
Ärge palpeerige veeni pärast ravi! Kui veenipunktsiooni käigus tekivad raskused ja veeni uuesti palpeeritakse, tuleb see piirkond uuesti desinfitseerida.
16.Eemaldage nõelalt värviline kaitsekate.
17. Kinnitage veen. Võtke vasaku käega kinni patsiendi küünarvarrest nii, et pöial oleks veenipunktsioonist 3-5 cm allpool ja sirutage nahka.
18.Sisestage nõel veeni.
Nõel koos hoidikuga sisestatakse lõikega ülespoole 15º nurga all.
19.Sisestage hoidik katseklaasi.
Katseklaas sisestatakse hoidikusse selle kaane küljelt. Vajutage pöidlaga toru põhja, hoides samal ajal nimetis- ja keskmise sõrmega hoidiku serva. Püüa mitte omanikku vahetada, sest... see võib muuta nõela asendit veenis.
Vaakumi mõjul hakkab veri katseklaasi iseseisvalt voolama.
Hoolikalt doseeritud vaakummaht tagab vajaliku veremahu ja täpse vere/reaktiivi suhte tuubis.
Ühelt patsiendilt mitmesse katsutisse vereproovide kogumisel järgige katsutite täitmise õiget järjestust.
1) veri mikrobioloogilisteks uuringuteks
2) looduslik veri ilma antikoagulantideta seerumi saamiseks (biokeemia) - punane punn, geeliga vakutainerid või hüübimiskiirendid (granulaat) - kollane kork
3) tsitraatveri koaguloloogilisteks uuringuteks - sinine pistik
4) veri EDTA-ga (EDTA, KZA) hematoloogilisteks uuringuteks - lilla (lilla) punn
5) glükolüüsi inhibiitoritega (fluoriididega) veri glükoosi määramiseks - hall punn
6) veri liitiumhepariiniga (LH) gaaside ja elektrolüütide jaoks.
20. Eemaldage (lõdvendage) žgutt niipea, kui veri hakkab katseklaasi voolama.
21.Paluge patsiendil rusikas lahti võtta.
22.Eemaldage katseklaas hoidikust.
Katseklaas eemaldatakse pärast seda, kui veri on sellesse lakanud. Katseklaasi on mugavam eemaldada, toetades pöidla hoidiku servale.
23.Sega täidetud katseklaasi sisu.
Sisu segatakse, keerates toru mitu korda ümber, et veri ja täiteaine täielikult seguneks. Terav raputamine võib viia vererakkude hävimiseni.
III. Protseduuri lõpp
24.Kandke veenipunktsiooni kohale kuiv steriilne riie.
25.Eemaldage nõel veenist.
26.Kinnitage veenipunktsiooni kohale surveside või bakteritsiidne plaaster (5-7 minutiks).
27. Desinfitseerige kasutatud seadmed.
28. Veenduge, et patsiendi tervis on hea.
29. Märgistage võetud vereproovid, märkides etiketile patsiendi nime ja verevõtu aja. Rakenda oma allkiri.
30. Transpordige märgistatud katseklaasid spetsiaalsetes kaanega konteinerites (termokottides) vastavatesse laboritesse.
Tarnimine laborisse: termokotis kohe pärast verevõttu.
Loeng nr 4 "Patsiendi ettevalmistamine uriini, väljaheidete ja röga uurimise laboratoorseteks meetoditeks."
Uriini uurimine
Uriin (uriin) – bioloogiline vedelik, milles ainevahetuse lõpp-produktid eemaldatakse organismist. Uriin moodustub vereplasma filtreerimisel glomerulites ning enamiku selles lahustunud ainetest ja torukestes veest tagasiimendmisel.
Uriini koostis võib varieeruda sõltuvalt joodud vedelikust ja tarbitud toidust, füüsilisest ja neuropsüühilisest seisundist.
Uriinianalüüs annab aimu mitte ainult neerude, vaid ka teiste organite, nagu maks, süda, seedetrakt jne, tööst.
Patsient kogub uriini iseseisvalt (välja arvatud lapsed ja raskelt haiged patsiendid).
Uriinianalüüsi tulemused sõltuvad suuresti selle kogumise tingimuste järgimisest (kogumise aeg, säilitustingimused, nõude puhtus, hügieenireeglite järgimine, eelmisel päeval joodud vee kogus, toidu iseloom jne). .
1. Laboratoorsete klaasnõude valik ja valmistamine
Uriin tuleb koguda kuiva, puhta anumasse, mis on puhastus- ja desinfektsioonivahenditest hästi pestud. Nõusid pestakse jooksva vee ja soodaga. Soovitav on kasutada laia kaela ja kaanega anumat. Võimaluse korral tuleb uriin koheselt koguda konteinerisse, milles see laborisse toimetatakse. Kui see ei õnnestu, on soovitav koguda see puhtasse anumasse (taldrik, purk jne), kus varem uriini ei olnud (kuna pottides ja anumates tekib fosfaadi sete, mis jääb alles ka pärast loputamist ja aitab kaasa vee lagunemisele). värske uriin) ja seejärel valage kogu saadud osa anumasse.
Parim on koguda uriini spetsiaalsetesse kaanega plastmahutitesse.
Dieet
Toitumine peaks olema tavapärane päev enne ja uurimiseks uriini kogumise päeval, vaba vedeliku maht peaks olema 1,5-2 liitrit. Testi eelõhtul on soovitatav mitte süüa köögi- ja puuvilju, mis võivad muuta uriini värvi (peet, porgand jne).
Uriini kogumine toimub pärast välissuguelundite põhjalikku tualetti, nii et nende voolus ei satuks uriini. Välissuguelundeid pestakse jooksva või keedetud vee ja seebiga ning kuivatatakse salvrätiku või rätikuga.
Uriini kogumine
Urineerimisel peaksid mehed nahavoldi täielikult tagasi tõmbama ja vabastama ureetra välisava.
Naised peaksid häbememokad levitama. Enne materjali kogumist on soovitatav tuppe asetada tampoon, et vältida leukotsüütide, bakterite ja punaste vereliblede sattumist uriini. Menstruatsiooni ajal ei tohi uriini koguda. Erilist tähelepanu tuleks pöörata rasedate naiste uriini kogumisele.
Uriini säilitamine
Analüüsiks kogutud uriini võib säilitada mitte rohkem kui 1,5–2 tundi (tingimata külmas temperatuuril 0–+ 4ºС); säilitusainete kasutamine on ebasoovitav, kuid lubatud, kui urineerimise ja urineerimise vahel on rohkem kui 2 tundi. Uuring.
Pikaajaline seismine toob kaasa füüsikaliste omaduste muutumise, bakterite vohamise ja uriinisetete elementide hävimise. Sel juhul nihkub uriini pH kõrgematele väärtustele bakterite poolt uriini eralduva ammoniaagi tõttu. Mikroorganismid tarbivad glükoosi, nii et glükosuuriaga võite saada negatiivseid või alahinnatud tulemusi.
Kogu patsiendile edastatav teave peab olema talle arusaadav, seega tuleks vältida meditsiiniliste terminite kasutamist. Patsient peab uuringuks saama nõusoleku.
Patsiendi juhendamisel peaks ta saama vastused järgmistele küsimustele:
Üldine uriinianalüüs
Uuringu eesmärk:
Uriini füüsikaliste omaduste (värvus, läbipaistvus, reaktsioon, tihedus) määramine;
Uriini biokeemiliste omaduste (glükoos, valk jne) määramine;
Sette (vererakud, epiteel, soolad jne) mikroskoopiauuring.
Normaalväärtused:
Patsiendi ettevalmistamine uuringuks:
1. Juhtimisjuhised.
2.Laboratoorsete klaasnõude väljastamine.
3.Juhiste väljastamine.
Varustus: uriinikogumisnõu või puhas kuiv purk (mahutavus – 200 ml)
Bioloogilise materjali võtmine:
Patsiendi juhised
Usaldusväärsete tulemuste saamiseks tuleb järgida järgmisi tingimusi:
· Võimalusel vältige diureetikumide võtmist;
· enne uriini kogumist analüüsiks on tugev füüsiline aktiivsus äärmiselt ebasoovitav. Mõnel juhul põhjustab see valgu ilmumist uriinis.
Üldanalüüsiks kogutakse esimene hommikune uriin. Hommikul pärast ärkamist peab patsient hoolikalt hoolitsema väliste suguelundite eest. Kogu hommikuse uriini osa kogutakse kohe pärast und tasuta urineerimisega. Uriini ei saa võtta anumast ega potist. Tervel inimesel on hommikuse uriini maht 150-200 ml.
Tarnimine laborisse:
Ambulatoorselt: Kogutud uriin toimetatakse saatekirjaga kohe laborisse hiljemalt kell 9.00.
Uriiniproov Nechiporenko järgi
Uuringu eesmärk: erütrotsüütide ja leukotsüütide arvu seose tuvastamine uriinis, selle indikaatori dünaamika hindamine, peidetud põletikulise protsessi tuvastamine.
Normaalväärtused: Tavaliselt sisaldab 1 ml uriini mitte rohkem kui 1000 erütrotsüüti, mitte rohkem kui 2000 leukotsüüti, hüaliinkipsi ei ole, preparaadis on lubatud üks.
Patsiendi ettevalmistamine uuringuks:
1. Juhtimisjuhised.
2.Laboratoorsete klaasnõude väljastamine.
3.Juhiste väljastamine.
Varustus: uriinikogumisnõu või puhas, kuiv purk (mahutavus 50-100 ml)
Bioloogilise materjali võtmine:
Patsiendi juhised
Uriini uurimiseks Nechiporenko järgi koguge keskmine portsjon uriini kohe pärast magamist. Hommikul pärast ärkamist peab patsient välissuguelundeid põhjalikult puhastama. Alustage urineerimist tualetti, lõpetage urineerimine, koguge keskmine osa laboriklaasi ja lõpetage urineerimine tualetti. Uriini ei saa võtta anumast ega potist.
Uuringu jaoks piisab 10 ml uriini kogumisest.
Tarnimine laborisse:
Haiglatingimustes: uriin antakse õele postis.
Ambulatoorselt: Kogutud uriin toimetatakse saatekirjaga kohe laborisse hiljemalt kell 9.00.
Amburge'i uriiniproov
Patsiendi juhised
1) Hommikul peab patsient oma põie tualetti tühjendama, sest... öist uriini ei koguta. On vaja meeles pidada tühjendusaega.
2) Kolme tunni pärast peab patsient kogu uriini viima kaasasolevasse anumasse. Enne uriini kogumist peab patsient läbima põhjaliku välissuguelundite hügieenilise tualeti.
Tarnimine laborisse:
Haiglatingimustes: uriin antakse õele postis.
Uriiniproov Zimnitski järgi
Uuringu eesmärk: neerude kontsentratsiooni ja eritusfunktsioonide määramine
Normaalväärtused:
Uriini kogus on 1200-20000 ml.
Suhteline tihedus (erikaal) – 1008 – 1024.
Öine diurees moodustab 1/3 päeva jooksul eritunud uriini koguhulgast.
Uriini koguhulk moodustab 65-75% päevas joodud vedelikust.